Птенцы из шишек: Аппликация «Птенец» из природных материалов

Аппликация «Птенец» из природных материалов

Осенью обязательно надо запасаться разными природными материалами для детских поделок. Пожалуй, самыми популярными являются каштаны, желуди и шишки. В школе приветствуются работы из овощей и фруктов. Ребята стараются придумать поделки из тыквы или кабачков. В общем, богатый осенний урожай радует людей не только на столе, а и в качестве поделочного материала. Желтые и красные листья добавляют композициям красок, ими хорошо украшать готовый результат.
Вернемся к сосновым шишкам. Из них можно мастерить не только поделки, но и клеить объемные аппликации. Сегодня покажем, как сделать картинку «Птенец». В работе используем следующие материалы и инструменты:

Начинаем аппликацию с размещения на картоне двух шишек. Для головы мы выбрали закрытую (недозрелую) шишку. Поскольку элементы тяжелые, для приклеивания используем специальный клей по дереву.

Два желтых листочка – крылышки с перьями. Нам понравились листья рябины, но можно выбрать и остроконечные осиновые листья. При желании крылья можно сделать многослойными и разноцветными. Думаю, аппликация станет еще интереснее.

Для приклеивания используем флакон с ПВА. Смазываем только середину деталей.

Птичьи лапки сделаем из зеленых листочков хризантемы. Обломаем лишние зазубрины. Лапки готовы.

Смазываем новые элементы клеем и прикладываем снизу шишки – туловища.

Хохолок – декор необязательный, но с ним аппликация будет смотреться ярче. Это красные листья дикого винограда, сорванные еще по осени.

Приклеиваем хохолок к картону над головой птенца.

Когда-то эти засушенные образцы были цветками полевой ромашки. Сделаем из них герою глаза. Достаточно лишь оборвать часть белых лепестков.

Выбираем место на голове для приклеивания глаза с ресничками.

Добавляем герою хвостик из листа березы.

Украшаем фон зернами пшена и растительностью.

Аппликация «Птенец» из природных материалов готова. Всем творческого вдохновения!

👌 Детские поделки из природных материалов, хенд мейд

Из природных материалов можно сделать много красивых поделок, которые украсят ваш дом, детскую комнату или просто подарят ребенку много позитива от совместного времяпроведения с родителями.

Последний раз подобным я занималась еще, будучи маленькой девочкой. С тех далеких времен прошло много времени, но опыт остался и пригодился. Теперь уже не мне показывали, как склеивать каштаны с шишкой, чтобы получить птенца, а я рассказывала и показывала сыну магию превращения природных материалов в зверюшек и птиц.

Если для кого-то не составляет труда придумать забавное существо из материалов, которые нам подарила природа, то для других нужно описание или, как мы сейчас выражаемся, мастер-класс.

Сегодня я с удовольствием поделюсь с вами теми поделками из природных материалов, которые мы с сынишкой делали для выставки в детский сад на «День осени». Их сможет сделать любой ребенок, если ему немного помочь, но ведь родители для этого и нужны, чтобы помогать.

Для работы необходимы:

— шишки

— каштаны

— семечки тыквы

— скорлупки орехов

— черный перец горошком

— семена репейника (будяки)

— перья

— сухая трава

— картон

— кусочки проволоки

— клей (универсальный или клеевой пистолет)

Полевая мышь

Чтобы сделать мышку, необходимо использовать шишку-туловище, 2 семечки тыквы-ушки, черный молотый перец — глазки и носик, кусочек проволоки — хвостик.

Все детали соединяем клеем и получаем красивого зверька.

Грибочки

Чтобы сделать грибочки необходимы 2 шишки с отрезной верхней частью (чтобы клеились хорошо) и 2 скорлупки ореха.

Склеиваем шишку-ножку со скорлупкой-шляпкой.

Осенняя муха

Чтобы сделать назойливую осеннюю муху необходимо взять 2 будяка (семена репейника) разных размеров (голова и туловище), черный перец горошком (глаза), листья вечнозеленых кустов (крылья).

Склеиваем все детали, чтобы получить вот такую красотку.

Птенцы в гнезде

Эта поделка немного сложнее предыдущих. Для работы необходимы шишки (туловища птенцов), каштаны (их головы), черный молотый перец (глаза), из цветной бумаги ромбики (клювики). Также необходима сухая трава, перья и веточки для формирования гнезда.

Птенцов склеиваем (туловище, голова, глаза, клювик). Из травы формируем гнездо. Усаживаем птенцов внутрь гнезда.

Гнездо украшаем перьями и веточками.

Фоторамка

Для любой любимой картинки вашего ребенка можно сделать фоторамку из семечек тыквы. Для этого наклеим любимую картинку (фото, наклейку и т.д.) на картон круглой (овальной, квадратной или произвольной формы) и обклеиваем край картона семечками тыквы.

Вот такие поделки делали мы с ребенком. А вы делаете поделки из природных материалов?

Чтобы получать лучшие статьи, подпишитесь на страницы Алимеро в Яндекс Дзен, Вконтакте, Одноклассниках, Facebook и Pinterest!

Северные попугаи

Они поют только тогда, когда летают. Сидя на ветках, не издают ни звука

В Украине этих птиц, предки которых появились на Земле девять миллионов лет тому назад, называют шишкарями, в России — клестами, в Беларуси — крыжадзюбами.

А известный зоолог Альфред Брем называл их северными попугаями. И в самом деле, эту птичку из семейства вьюрковых можно спутать с попугаем из-за загнутого клюва, чрезвычайной смекалки и особой манеры ерзать по веткам.

КЛЮВ ИДЕАЛЬНО ПРИСПОСОБЛЕН ДЛЯ ЛУЩЕНИЯ ШИШЕК

Вы, наверное, видели таких птиц. Их достаточно легко отличить от других по яркому оперению, странному пению и особенному клюву, согнутому, похожему на плоскогубцы. Такой клюв будто специально создан, чтобы работать с шишками. Собственно, так и есть.

Нижняя и верхняя часть клюва у шишкарей согнуты и перекрещены между собой. Это помогает птицам ловко вытягивать из-под чешуи шишек сосны и ели свою любимую еду — семена. К слову, одной из особенностей брачного периода есть то, что самец и самка кормят друг друга семенами.

Поженившись, в конце зимы или в начале весны они делают гнездо в верховьях дерева, где впоследствии самка высиживает малышей. Интересно, что птенцы вылупляются из яйца с прямым клювом, и только недели через три его края перекрещиваются. Поэтому родители сначала помогают малышам добывать семена, а когда сформируется клюв, учат их, как это делать…

На землю птицы спускаются редко. Им значительно комфортнее на ветках деревьев, по которым они все время скачут в поисках еды, активно работая своим необычным клювом.

Все шишкари водятся в Северном полушарии, из-за этого их часто считают таежными птицами. Но они одинаково хорошо чувствуют себя и в хвойных лесах Евразии, и Америки, и даже Африки.

В Украине распространены три вида шишкарей — шишкарь сосновый — залетная зимняя птица северных областей, шишкарь еловый — оседлая птица Карпат, Крыма, который охотно залетает на остальные территории, и шишкарь белокрылый — редкая зимняя птица, которая прилетает в северные территории страны.

В УКРАИНЕ САМЫЙ РАСПРОСТРАНЕННЫЙ ШИШКАРЬ ЕЛОВЫЙ

Шишкарь-еловик — одна из немногих птиц, которая не улетает в теплые края. Он даже гнездится тогда, когда еще лежит глубокий снег, — в конце зимы и в начале весны.

В урожайный год шишкарям зимой вдоволь корма, чтобы прокормить птенцов. Они и начинают сооружать гнезда и выводить птенцов в сытную для них пору.

Еловый шишкарь строит такое теплое гнездо, что ни яйца, ни птенцы в нем не замерзают. Места гнездования этих птиц непостоянны, это зависит, в первую очередь, от кормовой базы — шишек. Практичные птицы не разбазаривают свое драгоценное время. Если семечки плохо доставаемы из шишек, птица просто выбрасывает ее и берется за новую. К упавшим шишкам тоже проявят интерес многие лесные обитатели. Хотя бы белки, которые только этого и ждут. Или семечки разлетаются по лесу, чтобы упасть на благоприятную почву.

Если же шишек не хватает, шишкари едят хвойные почки или даже еловую смолу с корой. И все же в неурожайный на шишки год молодые шишкари часто погибают.

ЛЮБИМОЕ ЛАКОМСТВО СОСНОВОГО ШИШКАРЯ — ШИШКИ СОСНЫ

Сосновый шишкарь от елового отличается более массивным клювом и несколько большими размерами. Его мощный клюв и хорошо развитые челюсти свидетельствуют об особенной приспособленности к добыванию семян из сосновых шишек. Шишкарь сосновый часто придерживает шишку лапками и лущит ее клювом. Таким же образом, но уже вниз головой, он добирается до содержимого висячих шишек. Иногда он забирает шишку с собой, чтобы полакомиться в более благоприятных условиях.

По самому названию птицы понятно, что любимым лакомством являются сосновые шишки. Поэтому птичка достаточно редко встречается в хвойно-лиственных лесах. Зато охотно гнездится на севере Европы, в частности в Скандинавии. В Украине сосновый шишкарь — это залетная зимой птица, которую больше всего привлекают территории Полесья.

БЕЛОКРЫЛЫЙ ШИШКАРЬ — РЕДКИЙ НА НАШИХ ТЕРРИТОРИЯХ

В Украине белокрылые шишкари — редкие птицы, они лишь временами залетают зимой на территорию Полесья, где их можно и увидеть, если очень повезет.

ФОТО ИГОРЯ КОЗИЦКОГО

Птица эта — немного меньше других шишкарей. Любит густые хвойные леса и искусственные насаждения, которые состоят из лиственницы и сосны.

СМОЛА ШИШЕК БАЛЬЗАМИРУЕТ ПТИЧЕК

Существует немало рассказов и легенд о шишкарях, которые издавна привлекают людей своими особенностями.

Одна такая легенда повествует, что когда Иисуса распяли, то такая птица подлетела и пыталась вытянуть гвозди. Но ей это никак не удавалось, только клюв поломала. В знак благодарности участливую птичку наградили уникальным клювом, который в закрытом виде образует крест и помогает ей доставать семена из шишек. Из-за того что смола имеет резкий вкус, птицам можно не бояться хищников, потому что для них они вовсе не вкусны.

А еще благодаря смоле шишек организм шишкаря будто бальзамируется, потому в древности этих пернатых считали святыми птицами.

Поделка Птички в гнезде — Kidmade

2015-06-06

Птички в гнезде

Замечал ли ваш ребенок птиц зимой? Какие из них не улетают в теплые края, а зимуют на родине? Расскажите ребенку, что зимуют в родных краях воробьи, синички, снегири, вороны.  А чтобы подкрепить свои слова, предложите ребенку смастерить поделку из природных материалов (из еловых и сосновых шишек, желудей и кленовых семян-вертолетиков) – птичек в гнезде.

Смастерим трех птичек, одну большую и двух поменьше, птичку-маму и двух птенцов. И посадим их в гнездышко.

Для работы необходимо приготовить: 

• большую еловую шишку;
• две маленькие сосновые шишки;
• три кленовых вертолетика;
• три шляпки от желудей;
• 5-6 ивовых прутиков;
• проволоку;
• набор пластилина;
• стек для работы с пластилином;
• небольшую соломенную тарелку.

Поэтапная инструкция изготовления поделки.

Этап 1
. Сначала изготовим большую птичку-маму. Нам понадобится большая еловая шишка и шапочка от желудя. Шишка – это туловище. Из пластилина делаем голову, закрепляем на ней шляпку от желудя и прикрепляем к туловищу. 

Этап 2
. А крылышки мы сделаем из вертолетиков. Отрезаем немного пластилина, закрепляем половинку вертолетика и вставляем ее в шишку. Точно так же делаем второе крыло.

Этап 3.
Из кусочка красного пластилина делаем клюв, а из черного – два глаза.

Этап 4.
Птенчиков смастерим из маленьких сосновых шишек точно так же, как и птичку-маму.

Этап 5.
Теперь надо свить птичьей семьи гнездышко из ивовых веточек. Берем веточку и соединяем концы при помощи проволоки так, чтобы саму проволоку было незаметно.

Этап 6.
Следующую веточку обматываем вокруг первой и ее концы тоже соединяем проволокой. Таких веточек нужно 5-6.

Этап 7.
Получившийся ивовый круг укладываем на соломенную тарелку – гнездо готово. Осталось только поселить в него наших птичек.

Этап 8.
Чтобы птички не падали, прикрепляем их к гнезду при помощи пластилина.

Гнездо с птичьей семьей готово.

Назначеные фильтры

Навык

• Воображение
• Координация
• Логика
• Мелкая моторика
• Память
• Пространственное восприятие
• Фантазия
• Чувство цвета

Способности

• Учебные и творческие
• Умственные и специальные
• Конструктивно-технические
• Художественно-изобразительные

Галерея картинок

Похожие статьи

Е.Д.Краснова. Большой пестрый дятел

Есть мнение, что дятлы – очень умные птицы. Особенно большой пестрый дятел, поскольку у этого вида обнаружены зачатки «образования» — передача приобретенных полезных навыков молодежи. Еще потому, что они способны к рачительному использованию пищевых ресурсов. А кроме того у больших пестрых дятлов есть сложная система демонстрационных поз для выяснения отношений при территориальных конфликтах, своего рода «язык жестов».

Большой пёстрый дятел – один из представителей рода пёстрых дятлов, или по-латыни Dendrocopos major, которые несведущему могут показаться очень похожими. В полном соответствии с названием, окраска у них пёстрая из белых и черных пятен. В игре светотени под пологом леса такой рисунок помогает птице стать невидимкой. Латинское название Dendrocopos (дендрокопос) состоит из двух древнегреческих частей: «дендрон», что означает «дерево», и «копос» — удар, и говорит о способности долбить древесные стволы. Русское слово «дятел» отражает ту же биологическую особенность, в старину оно звучало как «делбтел», что означает: «тот, кто долбит». Полное имя героя нашего рассказа, большой пёстрый дятел, отражает еще и размеры: он самый крупный среди пестрых дятлов. Латинское прилагательное «major» означает то же самое — «бОльший». 

Однако чтобы узнать его при встрече, полагаться на размер не стоит, лучше рассмотреть рисунок пятен, который содержит множество подсказок. Первый признак большого пёстрого дятла – большие белые «заплаты» на крыльях, которые кроме него носят еще три вида: редкий средний пёстрый дятел, сирийский дятел, недавно вселившийся в среднюю полосу России, и белокрылый, обитающий в Средней Азии. Чтобы отличить большого пёстрого от сирийского и среднего собратьев, нужно внимательно вглядеться в рисунок на лице: у двух других черные «усы» не дотягиваются до затылка, а у среднего пёстрого дятла еще и брюшко не белое, а рыжее. Добавим, что в оперении у этих дятлов, кроме черного и белого, есть еще и красные участки. Молодые птицы, недавно вылетевшие из гнезда, носят на голове красные «береты», у самцов больших пёстрых дятлов красное пятно маленькое, а у самок его нет. Кроме того, в красный цвет окрашена нижняя часть брюха от лап до хвоста, если птица сидит на стволе, это пятно едва заметно, но оно обретает важную сигнальную роль во время брачных полетов. Особенно яркое оно у самцов и, без сомнения, служит одним из признаков мужественности. 

Из всех пёстрых дятлов большой — самый успешный. Во-первых, у него самый широкий ареал, который распространяется на всю лесную и лесостепную зоны Европы и Азии, а в период кочёвок этих птиц можно встретить даже в тундрах и степях. А во-вторых, из всех дятлов, он самый многочисленный. Ни одна зимняя прогулка по лесу не проходит без встречи с ними. 

Биологический успех этих дятлов объясняется тем, что они не капризны в питании. Личинки древоточцев, добываемые из-под коры, для них далеко не единственный корм. Он очень важен в период выкармливания птенцов, которым для быстрого роста, необходима белковая пища. Но еды им нужно так много, что тратить время на простукивание древесных стволов и проделывание дыр в коре родителям некогда, в это время им приходится хватать все подряд: тлю, жуков, муравьёв. Собирают они и мохнатых гусениц, оспаривая мнение, что это могут только кукушки. Что греха таить, в это время дятлы не брезгуют и чужими птенцами, вытаскивают их из гнезд, превращают в «отбивные» и скармливают по кусочкам собственным детям. 

Но изобилие белковой пищи существует только летом, а остальное время они питаются почти исключительно семенами, предпочитая маслянистые орешки хвойных деревьев. В мастерстве разделывать шишки равных большому пёстрому среди дятлов нет. Первая трудность, которой не справляются другие виды – оторвать шишку от ветки. Большой пёстрый дятел либо откручивает ее, либо точным ударом клюва перерубает деревянный черешок. Это умение не приходит само собой: если птенцы не видели, как это делают взрослые, у них ничего не получается. Бывает, подросший птенец долго мучается, безрезультатно теребя шишку, после чего один из родителей отгонит беднягу и демонстративно отрубит измочаленную шишку. 

То, что эти птицы делают с шишками после того, как оторвут, тоже свойственно только этому виду: для удобства вытаскивания семян из шишек большие пёстрые дятлы устраивают кузницы. Чаще всего они используют естественные щели в древесной коре, в изломе пня или между стволом и веткой,отходящей под острым углом, но бывает, что дятел сам выдалбливает в стволе отверстие нужного размера и тем самым изготавливает своего рода верстак. Не так много в птичьем мире интеллектуалов, способных изготавливать орудия труда. Пальма первенства принадлежит новокаледонским воронам, которые делают крючки из проволоки, чтобы доставать пищу из узких емкостей. А большой пёстрый дятел сооружает станок. У каждой птицы может быть несколько кузниц, но одна – самая любимая. За зиму под ней может скопиться целая гора чешуек, а шишек, бывало, насчитывали до 7 тысяч. 

Найдя распотрошенную шишку, нетрудно узнать, чья эта работа. Мыши откусывают у чешуй вершины, белки срезают чешуйки целиком, оставляя голую «кочерыжку», после клеста шишка остается целой, но каждая чешуйка с продольным разрезом. Шишка из кузницы дятла всегда растрепанная, найдешь такую в лесу, и сразу догадаешься: здесь был и работал большой пёстрый дятел. Другие так не умеют. 

В зимнее время на одной и той же территории сосуществуют местные птицы, которые здесь живут постоянно, и пришлые кочевники из других районов. Наблюдения за дятлами, которых пометили краской и благодаря этому различали индивидуально, показали, что стратегия добычи пищи у них разная. Местные птицы собирают шишки равномерно по всему кормовому участку, а мигранты набрасываются на самые урожайные деревья, быстро срывают лучшие шишки, после чего теряют к этому месту интерес и перемещаются в другое. Тактика обработки шишки у них тоже различается: постоянные жители над каждой шишкой трудятся дольше, поворачивают ее разными сторонами и выбирают все семена до последнего, а визитеры вынимают только те, для извлечения которых нужно меньше движений шеей, плечами и особенно корпусом. Каждая из двух стратегий по-своему выгодна. Из-за долгой работы над каждой шишкой местные птицы казалось бы, проигрывают по затратам энергии, но выигрывают за счет полноты эксплуатации ресурсов. 

Еще одна особенность дятлов – использование дупел круглый год. У других птиц, ведь, гнездо – не жилище, а только временное приспособление для выведения птенцов, после их вылета оно становится ненужным. Но дятлы в своих дуплах и прячутся, и ночуют. Зимой они проводят в дупле большую часть дня. Наблюдения показали, что они там спят более 16 часов, а на добывание пищи тратят по 5-6 часов в сутки. Каждая птица ночует в отдельном дупле, оно служит центром ее индивидуального участка. 

Свой участок птица охраняет от чужаков. Для выяснения отношений у больших пёстрых дятлов есть богатый набор сигнальных поз, которым особую выразительность придают белые плечевые пятна. Не исключено, что в этом и заключается их эволюционный смысл. В позе угрозы большой пёстрый дятел разводит крылья, при страхе отводит их назад и слегка складывает, противостояние равных по силе конкурентов выражается в замирании с поднятыми кверху клювами. Каждая поза имеет свой смысл, но самое важное – их последовательность, в ней-то и зашифрована информация о том, как следует достойно завершить конфликт. 

Семейная жизнь у дятлов тоже начинается с противостояния, самец как будто никак не может перестроиться с охраны территории на любовные игры и видит в самке подобие конкурента, а в некоторых позах самки просматривается страх. Но вскоре он исчезает и уступает место совместному токованию. Брачные игры больших пёстрых дятлов приурочены к высоким деревьям с сухими вершинами, возвышающимися над пологом леса. Дерево служит и вехой над занятой территорией, и музыкальным инструментом, точнее резонатором для усиления громкости брачной дроби, которая у дятлов играет ту же роль, что и песня у певчих птиц. По барабанной дроби можно определить вид дятла. У большого пёстрого она короткая, состоит из 12-13 ударов, которые сливаются в единый звук, длящийся около полсекунды и затухающий в конце. Птицы с соседних участков звонко перестукиваются, а поскольку дятлов в лесу много, то весь лес, еще заснеженный в эту пору, наполняется их дребезжащей музыкой. 

В семейной паре дятлов большая часть хлопот выпадает на долю самца: и на долбление дупла, и на насиживание кладки, он выделяет больше времени, чем самка. Когда птенцы покинут гнездо, папа и мама еще полмесяца держатся с выводком и докармливают отпрысков. Только после того, как в поведении подросших дятлят появятся элементы взрослой агрессии, родители оставляют их и до следующей весны живут раздельно. 

Класс: Птицы 

Отряд: Дятлоообразные 

Семейство: Дятловые 

Род: Пёстрый дятел 

Вид: Большой пёстрый дятел 

Латинское название: Dendrocopos major 

Размер: длина тела – 22-27 см, размах крыльев до 42-47 см. Вес: 60-100 г. 

Окраска: пёстрая из черных и белых пятен, крылья и бока преимущественно черные, на крыльях большие белые «заплаты». У молодых птиц на голове красная «шапочка», у взрослых шапочка черная, у самцов на затылке есть небольшое красное пятно. По бокам головы на белом фоне черные полосы «усы». 

Размножение. Гнездится в дуплах сухих деревьев. Дупло на высоте около 8 м, с овальным летком диаметром 4,5-6 см, глубина дупла 25-35 см, внутренний диаметр 11-12 см. В кладке 5-7 яиц. Птенцы появляются на свет недоразвитыми (птенцовый тип). Покидают гнездо в возрасте 20-23 дней. 

Продолжительность жизни в природе: средняя — 9 лет, максимально известный возраст в Европе — 12 лет 8 месяцев.

Клест

Клесты — птицы с узкоспециализированным питанием, приспособившиеся добывать семена из шишек хвойных деревьев. У всех видов клестов конец надклювья резко загнут к низу и перекрещивается с подклювьем, острый конец которого, наоборот, загнут кверху. Причем у одних особей надклювье загибается с правой стороны от подклювья, а у других с левой.

Клест-сосновик самый крупный из клестов, длина его тела 19,3—18,7 см. Он имеет и самый мощный клюв, длина которого 2, а высота у основания 1,4 см. Основа питания этой птицы — семена сосны, которые приходится добывать из сосновых шишек с твердыми, плотно прилегающими чешуйками. В меньше степени этот клест поедает семена других хвойных деревьев. Насекомых, повидимому, не ест совсем. Распространен на северо-западе России.

Клест-еловик чуть меньше сосновика, длиной около 17,1 см, а весит 45 г. Клюв у него 15,94 мм в длину и 10,98 мм в высоту. Питается семенами елей и других хвойных деревьев — пихты, лиственницы, сосны. В период кочевок может поедать семена кленов и других деревьев, а также вскрывать галлы на тополях и доставать оттуда тлей.

Белокрылый клест заметно меньше еловика: длина тела 16,7 см, а масса около 31 г. Клюв у этого клеста более тонкий, длиной 18,5 мм. Во многих местах своего обитания кормится в основном семенами лиственницы, иногда поедает и семена вороники. Ловит мелких беспозвоночных: тлей, пауков, гусениц пядениц, личинок пилильщиков.

Самый распространенный и известный из клестов — клест-еловик, который населяет лесную зону от западных границ государства до восточных. Чаще всего удается увидеть этих птиц зимой в ельниках. Небольшие стайки клестов, облепив вершину плодоносящей ели, срывают шишки и, зажав их лапами на конце еловой ветви, ловко выклевывают семена. Выбрав небольшую часть семян, птица бросает шишку и летит за другой. Подобрав шишку поддеревом, на котором кормились клесты, вы увидите на ней своеобразные повреждения. Часть чешуи расщеплена надвое, некоторые чуть отогнуты, и все же шишка не топорщится так, как та, что побывала в кузнице дятла.

Следы клеста-еловика (они заметно крупнее следов большинства наших
вьюрковых птиц)

Клесты не часто спускаются с еловых вершин вниз, но иногда все же слетают, чтобы поклевать снег пропитанный мочой животных. Опорная поверхность лапки клеста довольно велика, по длине превышает размеры лапы даже более крупного щура. Ее длина 4,4, ширина 1,6 см. Сидя на снегу, птица держит лапки довольно широко расставленными. Ширина следовой дорожки около 6 см. Передвигается клест короткими скачками.

Пожалуй, все наслышаны о том, что клесты могут размножаться даже среди зимы. Действительно, гнезда этих птиц находили во все времена года. В средней полосе России клесты чаще приступают к гнездованию в марте. В годы одновременного урожая семян сосны и лиственницы некоторые птицы вновь начинают гнездиться в августе и сентябре. Зимой, с декабря по март, гнезда клестов находят лишь в районах с обильным урожаем семян ели.

Гнезда обычно располагаются на густых хвойных деревьях, чаще всего н елке, реже на сосне, на высоте от 2 до 10 м от земли. Снаружи оно сделано из тонких еловых веточек, а внутри выложено из еще более тонких веточек, мхов и лишайников. В подстилке лотка видны шерсть разных животных и небольшое количество птичьих перьев. Диаметр гнезда около 13, высота 8 см, размер лотка 7,2×5,2 см.

В кладке обычно 3—5 яиц размером 22х 16 мм. Они почти белые, лишь с легким голубоватым оттенком и мелкими и редкими красновато-бурыми пестринами. Отложив первое яйцо, самка сразу же неотлучно находится в гнезде весь период инкубации, а самец ее кормит. Через 15 дней появляются птенцы, покрытые густым серым пухом. Первую неделю самка усиленно их обогревает, но по прошествии этого времен вместе с самцом начинает летать за кормом. Птенцы выкармливаются размягченными в зобу семенами хвойных деревьев.

Первые дни самка заглатывает фекалии птенцов, а в последующем они сами выбрасывают свой помет за край гнезда. Птенцы вылетают из гнезда в возрасте 16—20 дней, но первое время возвращаются в него на ночевку. Птенцы-слетки отличаются от взрослых птиц желто-зеленым оперением с темными наствольными пятнами. Покинувших гнездо молодых клестов взрослые птицы еще некоторое время продолжают подкармливать.

Известно что клесты выводят птенцов зимой.Найди и напиши объяснение

Ответ:

Эта пичужка, обитающая в лесах, занесена в Красную книгу Москвы, так как в последние годы встречается относительно редко. Живет клест в хвойных лесах. По размеру эта птица чуть больше воробья. Оперение самца и самки выглядит по-разному.

Самцы – яркие, красногрудые, самочки выглядят скромнее, их оперение – серо-зеленое. Клюв клеста по форме напоминает клюв попугая. Природа его сделала таким, чтобы птицы без труда могли отламывать кусочки коры, ветки, шелушить шишки.

Основу питания клеста составляют семена ели и других хвойных деревьев. Если пищи недостаточно, птицы включают в свой рацион семена других растений, которые удается добыть, а также насекомых.

Это еще одна птица, которая выводит свое потомство в зимнее время. Объясняется это довольно просто. Именно к зиме созревают семена в еловых шишках, а значит, птенцы не останутся без еды, ведь их рацион состоит именно из измельченных семян хвойных деревьев.

Потомство клестов

Пернатые, которые выводят птенцов зимой. В зимние месяцы у клестов практически нет конкурентов в борьбе за ресурсы. Большинство птиц улетает на зимовку в теплые страны, у белок зимой продолжительный сон. Питания клестам хватает в избытке, поэтому именно в это время они начинают вить гнезда и выводить птенцов.

Для гнезда самка выбирает место в густой кроне ели. Шапки снега, покрывающие еловые ветки, делают место гнездования недоступным для ветров и морозов. Материал для строения гнезда клесты также используют тот, который может сохранять тепло. В ход идут перья, пух, шерсть животных, кусочки мха.

Кладку клесты делают в феврале и начале марта. Иногда пара решает приступить к выведению потомства еще в январе. Мать согревает детенышей теплом своего тела. А папа-клест полностью занят добыванием пищи. Он приносит самке еловые семена, она их измельчает, смачивает слюной и кормит птенцов, не забывая питаться сама.

К двухмесячному возрасту клювики у потомства клестов начинают загибаться и малыши впервые пробуют добывать пищу самостоятельно, вылетая из гнезда.

Объяснение:

Vee’s Chick N Cones — Нэшвилл, Теннесси — Food Truck

Модель отслойки сетчатки у цыплят: Cone Rich и Novel

Аннотация

Фон

Разработка моделей отслойки сетчатки у мелких животных может быть сложной и дорогостоящей.Здесь мы создаем и охарактеризуем новую модель отслойки сетчатки с большим количеством конусов (RD) у цыплят.

Методология / основные выводы

Отслоения сетчатки были созданы у цыплят между 7 и 21 днями постнатального развития путем субретинальных инъекций физиологического раствора (SA) или гиалуроновой кислоты (HA). Инъекции проводили через расширенный зрачок под наблюдением под хирургическим микроскопом, используя второй глаз в качестве контроля. Иммуногистохимические анализы были выполнены на 1, 3, 7, 10 и 14 дни после отслоения сетчатки для оценки клеточных ответов фоторецепторов, глии Мюллера, микроглии и неастроцитарной внутренней глии сетчатки (NIRG).Клеточную пролиферацию выявляли включением бромдезоксиуридина (BrdU) и экспрессией ядерного антигена пролиферирующих клеток (PCNA). Гибель клеток определяли с помощью мечения ник-концов терминальной дезоксинуклеотидилтрансферазы dUTP (TUNEL). Как и в моделях RD у млекопитающих, наблюдается укорочение внешних сегментов фоторецепторов и неправильная доставка опсинов фоторецепторов в области RD. Гибель фоторецепторных клеток была максимальной через 1 день после RD, но продолжалась до 14 дней после RD. Мюллерова глия активировала глиальный фибриллярный кислый белок (GFAP), пролиферировала, обнаружила межкинетическую миграцию ядер и мигрировала в субретинальное пространство в областях отслоения.Микроглия стала реактивной; они активировали CD45, приобрели амебоидную морфологию и мигрировали к наружной сетчатке в областях RD. Реактивные клетки NIRG накапливались в отдельных областях.

Выводы / Значение

Субретинальные инъекции SA или HA в куриный глаз успешно вызвали отслоение сетчатки и клеточные ответы, аналогичные тем, которые наблюдаются на стандартных моделях млекопитающих. Учитывая относительно большой размер глаз и низкую стоимость, модель RD на цыплятах дает преимущества для высокопроизводительных исследований.

Образец цитирования: Cebulla CM, Zelinka CP, Scott MA, Lubow M, Bingham A, Rasiah S, et al. (2012) Модель отслойки сетчатки у цыплят: Cone Rich и Novel. PLoS ONE 7 (9):
e44257.

https://doi.org/10.1371/journal.pone.0044257

Редактор: Альфред Левин,
Университет Флориды, Соединенные Штаты Америки

Поступила: 15.04.2012; Одобрена: 31 июля 2012 г .; Опубликовано: 6 сентября 2012 г.

Авторские права: © Cebulla et al.Это статья в открытом доступе, распространяемая в соответствии с условиями лицензии Creative Commons Attribution License, которая разрешает неограниченное использование, распространение и воспроизведение на любом носителе при условии указания автора и источника.

Финансирование: Эта работа была поддержана грантом № KL2RR025754 от Национального центра исследовательских ресурсов и стартовыми фондами факультета офтальмологии Университета штата Огайо. Финансирующие организации не играли никакой роли в дизайне исследования, сборе и анализе данных, принятии решения о публикации или подготовке рукописи.

Конкурирующие интересы: Авторы заявили, что никаких конкурирующих интересов не существует.

Введение

Отслоение сетчатки (RD) является клинически важной причиной потери зрения; это обычное явление и разрушительно для зрения и самих глаз. Низкая острота зрения в результате РЗ изучается на моделях людей и животных на протяжении десятилетий [1]. Такие модели включают интравитреальные инъекции диспазы для ферментативного разрушения базальных мембран [2], [3], [4], субретинальные инъекции физиологического раствора для создания транзиторной РД [5] или гиалуроновой кислоты для хронической РЗ [6], [7], или интравитреальная инъекция клеток (напр.g., фибробласты, макрофаги, пигментные эпителиальные клетки сетчатки) [1], [8], [9], [10]. В настоящее время субретинальная инъекция гиалуроновой кислоты является распространенной моделью РД и помогла объяснить каскад событий, следующих за РД, которые могут привести к необратимой потере зрения [6].

Изменения фоторецепторов, глии и макрофагов / микроглии, по-видимому, имеют решающее значение в патобиологии РЗ. В частности, внешние сегменты фоторецепторов (OS) дегенерируют, и многие фоторецепторы апоптозируют, что приводит к истончению внешнего ядерного слоя (ONL) [11], [12].Этот апоптоз максимален через 3 дня после отслоения сетчатки в нескольких моделях млекопитающих [13]. Вследствие повреждения фоторецепторов происходит пролиферация, гипертрофия глии Мюллера с повышением регуляции промежуточных филаментов [13], [14], [15], [16] и миграция во внешний ядерный слой (ONL) [17], [18] ], [19], [20], способствуя образованию деструктивного рубца, который является признаком пролиферативной витреоретинопатии [6], [21]. Отростки Мюллера выходят за пределы внешней ограничивающей мембраны (OLM) и ограничивают повторный рост внешних сегментов фоторецепторов после повторного прикрепления сетчатки [18].Кроме того, макрофаги и микроглия становятся реактивными и накапливаются в значительном количестве в сетчатке и субретинальном пространстве и вносят свой вклад в патофизиологию сетчатки после RD [19], [22], [23], [24], [25], [26]. , [27].

Для моделирования отслоения сетчатки и пролиферативной витреоретинопатии использовались самые разные виды млекопитающих, включая кроликов, кошек, мышей и приматов [13]. Но, за исключением приматов, у этих видов нет сетчатки с большим количеством колбочек, необходимой для моделирования человека.Одно животное, которое действительно обладает подобной плотностью конусов, — это суслик ( Spermophilus beecheyi ), и оно использовалось в качестве модели для RD [28], [29]. К сожалению, у модели суслика есть существенные недостатки — плохая доступность и сложность в обращении. По этим практическим причинам идентификация более богатых колбочек животных моделей RD важна для изучения этого заболевания сетчатки. Кроме того, особую ценность будет иметь модель, которая позволит нам лучше понять молекулярную биологию макроглиальных и микроглиальных клеток и их реакцию на повреждение сетчатки и клетки-предшественники [30], [31], [32], [33] , [34], [35], [36].

Цыпленок использовался для изучения развития зрительной системы [37], [38] и, в последнее время, для изучения повреждения сетчатки и ее способности к регенерации [30], [31], [32], [33], [34], [35], [36]. Это дневной вид со сложной визуальной системой, подчеркивающей цветовое зрение. Сетчатка цыпленка содержит четыре одиночных колбочки, отвечающих за цветовое зрение, и одну двойную колбочку, которая может опосредовать ахроматическое восприятие движения [39]. Типы колбочек включают те, которые выражают визуальные пигменты, чувствительные к длинным (L), средним (M) или коротким (S) длинам волн.По соглашению, пики поглощения фотопигмента L-колбочек цыплят при 517 нм (также известного как куриный красный), фотопигмента M2 конуса при 508 нм (куриный зеленый), фотопигмента M1 конуса при 455 нм (куриный синий) и фотопигмента S-конуса при 415 нм. (куриная фиалка, наиболее похожая на человеческие S-шишки) [40]. Палочки содержат зрительный пигмент родопсин (поглощение около 500 нм) [40], [41]. Колбочек в сетчатке цыплят больше, чем палочек на 6–1 [42], в то время как у человека палочек примерно в 20 раз больше, чем колбочек [43]. Колбочки распределены по всей сетчатке цыпленка с наибольшей плотностью в центральной области без стержней, которая аналогична центральной ямке у человека [38], [41].

Этим исследованием мы хотим повысить ценность использования цыплят в биологических исследованиях. Мы предлагаем разработать новую модель РЗ у цыплят с помощью субретинальной инъекции гиалуроновой кислоты. Мы надеемся использовать его многочисленные преимущества моделирования, которые включают (1) сетчатку с большим количеством колбочек, (2) новую глию сетчатки [присутствует у нечеловеческих приматов, но не у грызунов], (3) множество данных о микро- и макроглиальных молекулярных реакциях. к повреждению сетчатки и регенерации сетчатки, (4) доступность мутантных окулярных штаммов, (5) секвенированный геном, (6) низкая стоимость, (7) широкая доступность, (8) простота обращения и (9) большие глаза, доступные к экспериментальной манипуляции.

Результаты

Отслоения сетчатки и контрольная группа исследовались на 1, 3–4, 7, 9–10 и 14–16 дни. Первоначально РПЭ выглядел уплощенным на 1-й день с потерей апикальных отростков (Рис. 1a – c). Через 9 дней после обработки отслоившийся РПЭ имел бугорчатый вид (рис. 1d – f) с признаками гиперплазии в некоторых образцах (рис. 1c). Наружные сегменты фоторецепторов были короче и дегенерировали к 1-му дню по сравнению с контролем (рис. 1). Кроме того, мы наблюдали истончение внешнего ядерного слоя (ONL), что свидетельствует о потере фоторецепторов (рис.1е). Отслоения солевого раствора разрешились к моменту времени 3 дня (не показано), в то время как отслоения гиалуроновой кислоты сохранялись.

Рис. 1. Измененная морфология наружной сетчатки при отслойке сетчатки у цыплят.

Временной курс окрашивания толуидиновым синим замороженных срезов отслойки сетчатки в дни 1, 3, 9, 10 и 14, демонстрирующий типичные дегенеративные изменения после HA RD, а также вариабельность образовавшихся отслоений. (а) Нормальная сетчатка с деталями внешней сетчатки, включая масляные капли (преимущественно оранжевые сферы) между внутренним и внешним сегментами фоторецептора и апикальные отростки РПЭ (вставка).(b – f) Наблюдается укорочение внешних сегментов и уплощение РПЭ в областях RD. Позже происходит уменьшение тел клеток во внешнем ядерном слое (f). Гиперплазия РПЭ отмечается на некоторых участках (В). ONL (внешний ядерный слой), OPL (внешний плексиформный слой), PR (фоторецептор), IS (внутренние сегменты), OS (внешние сегменты), RBC (красные кровяные тельца). Шкала шкалы (50 мкм).

https://doi.org/10.1371/journal.pone.0044257.g001

Иммуногистохимический анализ фоторецепторов показал неправильную транспортировку и дезорганизацию L / M-опсина, S-опсина и родопсина в областях отслоения сетчатки (рис. 2).Эти изменения были подобны как в физиологическом растворе (SA), так и в RD гиалуроновой кислоты (HA), даже несмотря на то, что SA RD исчезли к 3-му дню. Повторное распределение L / M опсина в теле фоторецепторной клетки было замечено с помощью конфокальной микроскопии. Опсин-иммунофлюоресценция присутствовала во внутренних сегментах, телах клеток и окончаниях аксонов стрессированных фоторецепторов в областях отслоения (Figs. 2j-l). Примерно на 9-й день RD наблюдалось снижение уровней родопсина и опсина с относительным сохранением L / M опсина и кальбиндина (рис.2). Мечение для S opsin и rhodopsin было уменьшено в отделенных областях сетчатки, тогда как метки для L / M opsin и calbindin остались, но оказались дезорганизованными (Рисунок 2q – t).

Рис. 2. Неправильное размещение фоторецепторных опсинов в RD.

Иммуноокрашивание кальбиндина (красный) и L / M опсина (зеленый) в контрольной сетчатке необработанного парного глаза (a – c) и RD гиалуроновой кислоты на 3 (d – f) и 9 (g – i) день. Обратите внимание на снижение интенсивности окрашивания L / M опсина на 9-й день HA RD. Конфокальная микроскопия демонстрирует раннее неправильное распределение L / M опсина (зеленый) с окрашиванием тела фоторецепторных клеток и ножек колбочек (стрелки, k, l) в SA RD на 3 день по сравнению с необработанными контролями.Окрашивание L / M опсина присутствует в областях, соответствующих IS / OS конуса, а также эллипсоидам колбочек в сетчатке нормального цыпленка (j). Некоторые транзитин-положительные глиальные отростки проходят под внешней ограничивающей мембраной (OLM, стрелка k, l). Как и в случае HA RD 3-го дня, SA-RD 3-го дня показывают неправильную транспортировку родопсина (красный), L / M-опсина (зеленый, m, n) и S opsin (зеленый, o, p), несмотря на рассасывание субретинальной жидкости. При продвинутой стадии HA RD (день 16 RD, q – t) происходит перераспределение L / M опсина и кальбиндина в теле клетки с потерей опсина и родопсина (скобка).ONL (внешний ядерный слой), OPL (внешний плексиформный слой), PRL (фоторецепторный слой). Шкала шкалы 50 мкм.

https://doi.org/10.1371/journal.pone.0044257.g002

Для оценки времени гибели фоторецепторов в этой модели был проведен TUNEL-анализ. Гибель клеток была значительно увеличена в отслоенной сетчатке (ANOVA, p = <0,0001, рисунок 3). Гибель клеток была максимальной на 1-й день после отслоения, а затем уменьшалась с течением времени (1-й день контроль: 1-й день RD (p <0,0001), 1-й день RD: 3-й день RD (p <0.0001), RD дня 1: RD дня 7 (p <0,0001) и RD дня 1: RD дня 14 (p = 0,0004)). Мечение TUNEL существенно не отличалось от контроля на 3, 7 и 14 день. Мечение проявляется в основном во внешнем ядерном слое (ONL), но некоторые клетки наблюдались в INL (данные не показаны). Толщина ONL, показатель выживаемости фоторецепторных клеток, не изменилась в первый день, но значительно уменьшилась в более поздние моменты времени после отслоения сетчатки, составляя 99% парного контроля на 1 день отслоения, 84% на 3 день, 55% на 7 день и 47% через 14 дней после отслоения сетчатки (рис.3, ANOVA; p = 0.0002). Средняя толщина ONL в областях отслоения была значительно меньше, чем в парном контроле на 14 день (p <0,0001) и пограничная на 7 день (p = 0,0088). Толщина ONL в RD 1-го дня была значительно больше по сравнению с 7-м и 14-м днями (p = 0,0005 и 0,0033, соответственно).

Рис. 3. Гибель фоторецепторных клеток у цыплят RD.

(a – f) Репрезентативные фотографии TUNEL-положительных клеток в контрольной сетчатке и в день 1, 3, 7, 9 и 14 HA RD. TUNEL-положительные клетки более распространены во внешнем ядерном слое сразу после отслоения.Желтыми линиями отмечены внутренняя и внешняя ограничивающие мембраны. (g) Количественная оценка TUNEL: скобка со звездочкой отмечает статистически значимые различия между контролем и днем ​​1 (p <0,0001), а также днем ​​1 и днем ​​3 (p <0,0001), днем ​​7 (p <0,0001) и днем. 14 (р = 0,0004). (h) Количественная оценка толщины внешнего ядерного слоя: скобка со звездочкой отмечает статистически значимые различия между днем ​​1 и днем ​​7 (p = 0,0005) и днем ​​14 (p = 0,0033). Планки погрешностей представляют собой стандартное отклонение.

https://doi.org/10.1371/journal.pone.0044257.g003

Оценивали клеточные ответы глии Мюллера на RD. Подобно находкам на моделях млекопитающих, экспрессия GFAP промежуточных филаментов увеличивалась в областях отслоения (Рис. 4) уже через 3 дня после отсоединения. Экспрессия транзитина, птичьего гомолога нестина млекопитающих, была аналогичным образом увеличена (фиг. 4d). Глиальные отростки, положительные по GFAP, транзитину и глиальному маркеру Мюллера TOP _AP (топографический маркер, экспрессируемый вдоль передне-задней оси, обнаруживаемый антителом 2M6) [44], выходили за пределы внешней ограничивающей мембраны (OLM) в областях RD уже на 3-е сутки (рис.2, 4). Области, соответствующие субретинальному рубцу, были визуализированы на 7 и 14 день с большими скоплениями субретинальных глиальных отростков, а также клеточными телами, положительными по Sox2 и TOP _AP (рис. 4).

Фигура 4. Мюллерова глия, активированная у цыплят RD: экспрессия промежуточных филаментов GFAP (необработанный (а), день 5 HA RD (c)) и транзит, гомолог нестина цыпленка (день 5 HA RD (d), необработанный, необработанный). показаны) по существу отрицательны в нормальной контрольной сетчатке и увеличиваются после RD к 3 дню (не показано).

GFAP- и транзитин-положительные глиальные отростки Мюллера проходят под внешней ограничивающей мембраной (OLM) в HA RDs (стрелки c, d) в субретинальное пространство. Маркер Мюллера TOP _AP (антитело 2M6) присутствует в основном в вертикальном распределении по всей необработанной сетчатке в глии Мюллера (b) и увеличивается, в частности, во внешней сетчатке ниже OLM в HA RD, с сопутствующей волнистостью внешней сетчатки ( е). Клетки в субретинальных рубцах положительны на маркер-предшественник Мюллера Sox2 (стрелка, e) и 2M6 (стрелка, f).

https://doi.org/10.1371/journal.pone.0044257.g004

О пролиферации клеток, особенно мюллеровой глии, сообщалось после отслоения сетчатки на моделях млекопитающих [13], [45], [46]. На Фигуре 5 показаны пролиферирующие клетки, присутствующие в отслоенной сетчатке; большинство из них были Sox2 / PCNA-положительными Мюллерова глия (рис. 5). PCNA-положительные клетки были более многочисленны, чем BrdU-положительные клетки, и преимущественно совместно локализованы с Sox2, но не с маркером NIRG гомеобоксным белком Nkx-2.2 (Nkx2.2), что указывает на пролиферацию глии Мюллера (рис. 5). Мюллерглия также обнаруживает интеркинетическую миграцию ядер в областях отслоения с миграцией ядер во внешнюю сетчатку (Figs. 4-5).

Рисунок 5. Пролиферация глии Мюллера после HA RD.

Иммуноокрашивание для обнаружения пролиферирующих клеток продемонстрировало больше PCNA (синий), чем BrdU (зеленый) положительных клеток в моменты времени, протестированные после RD (день 3, 7, 14). Sox2 (красный) маркирует ядра мюллеровской глии и клеток NIRG. Объединенные изображения PCNA, Sox2 и BrdU демонстрируют хорошую корреляцию PCNA и Sox2, в том числе в субретинальном рубце.Клетки, маркированные всеми тремя маркерами, отмечены стрелками, в то время как отрицательные клетки Sox2, маркированные PCNA и BrdU, отмечены открытыми стрелками.

https://doi.org/10.1371/journal.pone.0044257.g005

Сильно локализованная инфильтрация и активация сетчатки и субретинальной микроглии и макрофагов характерна для моделей RD у млекопитающих [22], [24], [25] . В глазах RD цыплят наблюдалось значительное накопление CD45-положительных микроглии / макрофагов в отслоенной сетчатке по сравнению с контролем (рис.6). Количественная оценка CD45-иммунофлуоресценции показала значительное увеличение средней площади сигнала на поле зрения с 2,8 × 10 ⁴ единиц относительной интенсивности в контрольной сетчатке до 25,0 × 10 ⁴ в сетчатке RD на 1 день (p = 0,0092), а также Сумма плотности CD45 увеличилась с 7,2 × 10 ⁵ до 64,2 × 10 ⁵ (p = 0,0165). Сумма плотностей была значительно увеличена на 3-й день сетчатки RD при 59,0 × 10 ⁵ по сравнению с контролем 3-го дня на 4,0 × 10 ⁵ (p = 0,0118), остальные дни не достигли значимости после коррекции Бонферрони.

Фигура 6. Микроглия имеет повышенную регуляцию у SA и HA RD цыплят.

SA RD (b) и HA RD (c) показывают повышенную регуляцию микроглиального маркера CD45 (зеленый) в областях RD по сравнению с контрольной сетчаткой (a). SA RD разрешается к 3-му дню. Микроглия приобретает амебоидную морфологию и мигрирует во внешнюю сетчатку / субретинальное пространство. Количественное определение окрашивания CD45 в HA RD с течением времени (d — сумма плотности и e — средняя площадь).

https://doi.org/10.1371/journal.pone.0044257.g006

Недавно новая популяция глиальных клеток (неастроцитарная внутренняя глия сетчатки (NIRG) была обнаружена в сетчатке многих видов животных, включая кур и приматов [ 34], [47] и особенно заметны после повреждения сетчатки в областях фокальной отслойки [34].Известно, что клетки NIRG экспрессируют Sox2, Sox9, Nkx2.2, транзитин и виментин, но отрицательны для GFAP и Pax2 [34]. Иммуноокрашивание клеток NIRG выявило накопление клеток NIRG выше фонового контроля в областях RD (рис. 7). К удивлению, клетки NIRG были обнаружены в субретинальных рубцах, а также на внутренней сетчатке.

Фигура 7. Клетки NIRG слегка активируются после HA RD цыпленка.

Клетки NIRG (стрелки) положительны для Nkx2.2 (зеленый, a – f) и Sox9 (оранжевый, c, d) и увеличиваются после HA RD по сравнению с контролем.Повышающая регуляция NIRGs меньше, чем мюллерова глия (Sox9 + / Nkx- клетки внутреннего ядерного слоя и внешней сетчатки). NIRG были идентифицированы в субретинальных рубцах (f, стрелка; зеленый = Nkx, синий = DAPI).

https://doi.org/10.1371/journal.pone.0044257.g007

Обсуждение

Насколько нам известно, это первое исследование, в котором цыпленок используется в качестве модели отслоения сетчатки. Система моделей цыплят с обогащением шишек имеет множество биологических, логистических и практических преимуществ.Вкратце, они предлагают преимущества в колбочках, глии, охарактеризованных ответах сетчатки, секвенированном геноме, доступности, низкой стоимости, простоте обращения и больших глазах. Хотя цыплят обычно не отбирают на основе генетического штамма, есть несколько доступных офтальмологических мутантов [см. Обзор [48]]. Поскольку глаз большой, инъекции в стекловидное тело могут быть легко выполнены для потенциально высокопроизводительного анализа терапевтических агентов.

Цыпленок выгодно отличается от суслика с точки зрения доступности, обращения и стоимости.Шишки цыпленка и суслика имеют сходство, но есть некоторые отличия (табл. 1). Сетчатка цыпленка служит тетрахроматическому зрению и содержит четыре одиночных колбочки (L, M1, M2 и S чувствительные) и одну двойную колбочку [39]. У сусликов дихроматическое зрение с колбочками, наиболее чувствительными к длинам волн M (518 нм) и S (436 нм), по данным тестирования ERG [49]. Как и птенцы, суслики также ведут дневной образ жизни с очень высокой плотностью колбочек: около 7,5 миллионов колбочек на сетчатку. Это в 1,6 раза больше плотности человеческого конуса (4.6 миллионов конусов) [50]. У них есть сетчатка, в которой 85% фоторецепторов представляют собой колбочки, около 5,7 колбочек на стержень [29]. Для сравнения: у цыплят по 6 шишек на стержень [42]. Самая высокая плотность колбочек у суслика (49,550 / мм ² ) находится в зрительной полосе, аналогичной центральной ямке, в горизонтальной полосе сетчатки на 2 мм вентральнее головки зрительного нерва [51]. Для сравнения: центральная область цыпленка имеет 10 000–16 000 колбочек / мм2, хотя средняя плотность конусов выше в других исследованиях [52].В отличие от шишек млекопитающих, шишки цыплят содержат капельки масла, которые отфильтровывают свет с длинами волн ниже 575, 520, 497 или 454 нм [39], [53]. Куриные стержни не содержат капли масла.

Несмотря на некоторые различия в структуре их колбочек по сравнению с млекопитающими, куриные колбочки показали сходную реакцию на отслоение сетчатки. Наружные сегменты фоторецепторов демонстрировали аномалии в отслоившихся областях уже через сутки после отслойки. Произошла неправильная транспортировка фоторецепторных опсинов и родопсина, аналогичная той, что используется в других моделях отслоения [28], [54], [55], [56], [57].Опсины конуса перераспределялись в плазматическую мембрану по мере дегенерации внешних сегментов. Подобно Sethi et al. [16], мы обнаружили перераспределение L / M опсина в теле клетки в сетчатке с более тяжелой дегенерацией в HA RDs. Мы также наблюдали окрашивание L / M опсина на теле фоторецепторных клеток и ножках колбочек в повторно прикрепленных глазах SA RD на 3 день.

Сетчатку суслика оценивали с помощью гистологических, молекулярных и электрофизиологических методов для определения реакции палочки и колбочки на RD.Как и у других видов млекопитающих, дегенерация наружного сегмента начинается в 1 день. Rex et al. [56], [57] продемонстрировали резкую потерю экспрессии мРНК и белка конусных опсинов в начале после RD (дни 1-3) с относительным сохранением экспрессии палочкового опсина. Наши исследования указывают на более длительное удержание маркеров колбочек в модели RD цыплят с некоторым окрашиванием L / M опсином и кальбиндином, обнаруживаемым на 14-й день RD. Тем не менее, мы отмечаем, что S opsin-позитивные колбочки демонстрируют крайнюю подавляющую регуляцию этих S-фотопигментов в областях тяжелой дегенерации, предполагая, что S-колбочки могут быть более чувствительными к повреждению от RD.Норк и др. [58] продемонстрировали значительное повреждение S-колбочек в RDs человека. Экспериментальные исследования RD дали неоднозначные результаты относительно того, являются ли S-колбочки более чувствительными к повреждению RD. Чтобы ответить на этот вопрос об относительной чувствительности к стрессу, необходимо провести дальнейшие исследования картирования S-конуса с помощью модели RD цыплят.

Хотя после RD происходит необратимая потеря некоторых фоторецепторов, исследования повторного прикрепления продемонстрировали восстановление палочек и колбочек, включая повторную экспрессию опсина колбочек [56], [57].Sakai продемонстрировал аналогичное временное истощение опсинов S и M колбочек в сетчатке сусликов, которые были отсоединены в течение 1 дня, а затем снова прикреплены [59]. Клинически и экспериментально важно, чтобы динамика клеточной гибели фоторецепторов после RD была подобна модели цыпленка и сетчатке человека. Умирающие клетки были наиболее многочисленны на 1-й день. Это раньше, чем пик гибели клеток на 3-й день, наблюдаемый в нескольких моделях RD млекопитающих [6]. Количество умирающих клеток сильно варьировалось между людьми, вероятно, из-за того, что размер отряда был различным.Однако толщина внешнего ядерного слоя, отражающая гибель фоторецепторных клеток, изначально сохранялась и не уменьшалась значительно до 7-14 дней после отслоения. Эти данные хорошо согласуются с данными человека, предполагающими, что интервал 7-30 дней после отслоения, вероятно, будет наиболее значимым для потери зрения из-за повреждения фоторецепторов [60], [61], [62], [63], [64] , [65]. Механизм потери зрения у пациентов с РЗ, влияющей на макулу, сильно коррелирует как с гибелью фоторецепторных клеток (на что указывает истончение внешнего ядерного слоя), так и с аномалиями в наружных сегментах фоторецепторов (на что указывает разрыв «промежуточной линии») на спектральная оптическая когерентная томография (SD-OCT) [66].Это нарушение может улучшиться у пациентов со временем и согласуется с улучшением остроты зрения [66]. Будущие исследования на цыплятах, включая использование SD-OCT, будут полезны для более точной оценки восстановления фоторецепторов после восстановления отслоения сетчатки. Здесь в большинстве экспериментов использовалась субретинальная гиалуроновая кислота, которая вызывала хроническую отслойку. В солевых RD отслоения рассосались к 3 дню. Однако в этих повторно прикрепленных солевых RD реакции были аналогичны ответам RD гиалуроновой кислоты, включая неправильный трафик фоторецепторных белков (рис.2k – l, m – p) и активация и миграция микроглии в субретинальное пространство (Fig. 6b).

Существует местный ответ Мюллерова глии в большинстве моделей RD у млекопитающих, а также в образцах ретинэктомии человека [6], [16]. Напротив, глия Мюллера у сусликов нереактивна в областях RD [28]. Это важная исследовательская обязанность. Модель RD цыпленка лучше подходит для RD кошек и человека, чем у суслика в своей заметной активации глии Мюллера, включающей повышающую регуляцию GFAP, дистальную миграцию и пролиферацию.Подобно этим другим моделям, процессы Мюллера выходят за пределы OLM и, по-видимому, создают субретинальные рубцы на некоторых глазах. Недавно было показано, что глия Мюллера пролиферирует, расширяет отростки и мигрирует под сетчатку с образованием субретинальных рубцов [21]. Сходным образом на модели цыпленка мы наблюдали пролиферацию мюллеровской глии и интеркинетическую миграцию ядер с перемещением к внешней сетчатке и распространением процессов за пределы OLM. Гистологическое исследование субретинального рубца у цыпленка указывает на скопление глиальных отростков Мюллера и клеточных тел.Эти результаты подтверждают, что некоторые клетки-предшественники Мюллера отделяются и полностью мигрируют в субретинальное пространство, тогда как некоторые вырастают отростки только в субретинальное пространство. Такие модели и механизмы миграции имеют особое значение для трансляционных исследований. Контроль активации глии Мюллера и глиоза может иметь решающее значение для купирования субретинальных рубцов и пролиферативной витреоретинопатии.

Сетчатка курицы содержит недавно идентифицированный особый тип глиальных клеток, называемый неастроцитарной внутренней глией сетчатки (NIRG).NIRG-подобные клетки были идентифицированы в сетчатке многих видов, включая собак и обезьян, но не в сетчатке грызунов [34], [47]. NIRG активируются и пролиферируют в ответ на химическое повреждение сетчатки с помощью NMDA и IGF-1 у цыплят, что приводит к множественным небольшим отслоениям сетчатки [34]. В этих отделенных областях мюллерова глия отсутствует, но скопление клеток NIRG граничит с мюллеровой глией вокруг поврежденных участков внутренней сетчатки, вплоть до того места, где обычно располагается мюллерова глия [34].Мало что известно о функции клеток NIRG в ответ на повреждение сетчатки. Чтобы определить, были ли клетки NIRG заметными в модели RD, созданной здесь, мы оценили популяции NIRG в отдельных областях. Эти исследования продемонстрировали небольшое увеличение количества клеток NIRG во внутренней сетчатке. Однако Nkx2.2-негативная мюллерова глия, экспрессирующая Sox2 и Sox9, была преобладающим типом глиальных клеток в отслоенной сетчатке в этой модели. Неожиданно некоторые клетки NIRG были обнаружены в субретинальных рубцах вместе с клетками, происходящими из Мюллер-глии (отрицательными для Nkx и положительными для Sox-9, а также Sox-2 и TOP _AP ).Эти исследования подтверждают мнение, что клетки макроглии вносят вклад в формирование субретинальных рубцов после отслоения сетчатки [21].

Подобно другим исследованиям на моделях млекопитающих, реакция макрофагов / микроглии на RD у цыплят впечатляет. Микроглия — это резидентные тканевые макрофаги ЦНС. В курином глазу их идентифицируют с помощью иммуноокрашивания на CD45 [67]. В необработанных глазах покоящаяся микроглия обычно располагается в плексиформных слоях сетчатки. После RD микроглия мигрирует к наружной сетчатке, активирует уровни CD45, приобретает амебоидную морфологию и проникает в субретинальное пространство.Накадзава и др. [22] определили важность макрофагального продукта MCP-1 в снижении выживаемости фоторецепторов на мышиной модели RD. Хотя у цыпленка нет известного гомолога MCP-1, будет полезно определить, могут ли другие специфические продукты макрофагов снижать выживаемость фоторецепторов, как в моделях млекопитающих [22], и есть ли роль микроглии, способствующей развитию глии Мюллера. разрастание и образование субретинального рубца.

В заключение, модель RD у цыплят имеет много общего с моделью человека и преимущества перед другими моделями млекопитающих.Это модель с большим количеством колбочек, удобная для исследований, и она может предложить дополнительные сведения о патобиологии отслоения сетчатки. Это может быть полезно для высокопроизводительных исследований нейропротекторных или антипролиферативных агентов, которые могут улучшить РЗ.

Материалы и методы

Животные

цыплят леггорна ( Gallus gallus domesticus ) были получены из Департамента зоотехники Университета штата Огайо. Их использовали в постнатальный период с 7 по 21 день (P7 – P21) для создания модели отслоения сетчатки в соответствии с протоколом, одобренным IACUC (№ 2009A0139).Лечился только один глаз. Цыплят содержали со свободным доступом к закваске Purina и воде с 12-часовым циклом от света до темноты в брудере из нержавеющей стали.

Хирургия отслойки сетчатки

Это исследование соответствует принципам Заявления ARVO об использовании животных в офтальмологических исследованиях и исследованиях зрения. Цыплят (P7–21) анестезировали ингаляционным изофлуораном через маску без дыхания. Расширение зрачка было достигнуто с помощью нескольких приемов капель тубокурарина гидрохлорида (Sigma: 6.7 мг / мл в физиологическом растворе с 0,1% бензалконием). Тубокурарин, нервно-мышечный блокирующий агент, который является конкурентным антагонистом никотиновых нейромышечных рецепторов ацетилхолина [68], был использован для расширения, поскольку радужная оболочка кур содержит преобладающие никотиновые холинергические рецепторы [69].

Левый глаз был обработан тампоном с бетадином, и было вставлено педиатрическое зеркало для век. Боковая кантотомия была сделана стерильным лезвием бритвы для лучшего обнажения глазного яблока. Конъюнктива была стабилизирована 0.12 щипцов, а затем был временно рассечен кончиком иглы 25 г для обнажения склеры. Иглу 25 г на шприце объемом 5 см3 вводили примерно на 3 мм кзади от лимба, и стекловидное тело отсасывали из центральной полости стекловидного тела до тех пор, пока глаз не слегка смягчился. Затем через это отверстие выполнялась субретинальная инъекция с помощью специальной иглы с тупым кончиком 30 г на шприце Hamilton (Hamilton Company, Reno, NV) путем осторожного введения кончика иглы в центральную сетчатку. Наконечник визуализировали через зрачок с помощью операционного микроскопа, в то время как роговица была покрыта покровным стеклом и гелем Genteal.Субретинальные инъекции приблизительно 25 микролитров стерильного физиологического раствора (n = 3) или неразбавленной гиалуроновой кислоты (Healon, 10 мг / мл; AMO, Санта-Ана, Калифорния; n = 32) были доставлены в левый глаз для увеличения объема сетчатки. В конце процедуры глаз обрабатывали офтальмологической мазью с эритромицином. Глаза были энуклеированы для анализа на 1 день (n = 7), 3–4 (n = 10), 5–7 (n = 6), 9–10 (n = 3) и 14–16 (n = 6). .

Энуклеация и гистология

Животных умерщвляли вдыханием газа CO ₂ с последующей индукцией пневмоторакса.Энуклеацию проводили путем отсечения периокулярной ткани и мышц, прикрепленных к глазному яблоку, с помощью щипцов и ножниц Wescott и рассечения зрительного нерва. Глобус был обработан, зафиксирован и разрезан, как описано ранее [70]. Лезвие бритвы использовалось для удаления переднего колпачка. Глаз помещали в фиксатор, содержащий фосфатный буфер с 4% параформальдегида и 3% сахарозы в 0,1 М фосфатном буфере при pH 7,4, на 30 минут. Глаза дважды промывали PBS в течение 10 минут и помещали в 30% сахарозу в PBS на ночь.Глаза помещали в раствор OCT (оптимальная температура резки, электронная микроскопия) и мгновенно замораживали. Срезы последовательно вырезали по 12 микрон в области RD для гистологического анализа.

Маркировка БрДУ

Интравитреальные инъекции 2 мкг 5-бром-20-дезоксиурдина (BrdU; 100 мкг / мл; Sigma-Aldrich) были сделаны примерно за 4 часа до эвтаназии (n = 4 цыпленка в каждый момент времени: день 1, 3, 7, 14). ), как описано ранее [36]. Замороженные срезы иммуноокрашивали с использованием антитела против BrdU (G3G4, банк гибридом исследований развития).BrdU-положительные клетки определяли на разных уровнях в области отслоения сетчатки для определения количества пролиферирующих клеток.

TUNEL Assay

Апоптоз

оценивали с помощью анализа TUNEL с набором In situ Cell Death Kit (TMR красный; 1215679910, Roche Applied Science) в соответствии с инструкциями производителя.

Иммуногистохимия

Иммуногистохимия была проведена для обнаружения маркеров, как описано ранее [34]. Антитела к родопсину (Rho 4D2, мышь, щедрый подарок Dr.R. Molday, Университет Британской Колумбии), L / M opsin (AB5405, кролик, Chemicon), S opsin (кроличий поликлональный анти-голубой опсин, Millipore) использовали для оценки фоторецепторных опсинов. Мышиный антикальбиндин (300; Swant Immunochemicals, Беллинцона, Швейцария) использовали для обнаружения фоторецепторного кальбиндина. Антитела к BrdU (G3G4, мышь, банк гибридом исследований развития) и PCNA (M0879, мышь, DAKO) использовали в качестве маркеров пролиферирующих клеток. CD45 (HIS-C7, мышь, Cedi Diagnostic) был маркером микроглии / макрофагов [67], GFAP (Z0334, кролик, Dako) и виментин (H5, мышь, DSHB) были маркерами мюллеровой глии.Sox-2 (Y-17, коза, Санта-Крус), Sox-9 (AB5535, кролик, Chemicon) и транзитин (EAP3, мышь, Developmental Studies Hybridoma Bank) были использованы для идентификации клеток NIRG и мюллеровской глии. DRAQ-5 (Biostauts Limited) использовали в качестве контркрашивающего средства для ядер для определения толщины внешнего ядерного слоя.

Анализ изображений

Микрофотографии были получены с использованием флуоресцентного микроскопа Leica DM5000B и цифровой камеры Leica DC500. Конфокальные изображения были получены с использованием Zeiss LSM 510 в Hunt-Curtis Imaging Facility.Анализ изображений был описан ранее [34]. Изображения были оптимизированы по цвету, яркости и контрасту, а изображения с двойной меткой наложены с помощью Adobe PhotoshopTM 6.0. Подсчет клеток производился по меньшей мере у трех разных животных в зоне максимального отслоения, а средние значения и стандартные отклонения рассчитывались на основе наборов данных. Чтобы свести к минимуму вариабельность региональных различий в сетчатке, подсчет клеток производился из одной и той же области сетчатки для контрольных областей и областей отслоения сетчатки. Иммунофлуоресценцию количественно оценивали с помощью Image-Pro 6.2. Идентичное освещение, настройки микроскопа и камеры использовались для получения изображений для количественной оценки. Фиксированные области были взяты из цифровых изображений с разрешением 5,4 мегапикселя. Эти области были случайным образом взяты из всех слоев сетчатки в областях отслоения или аналогичных контрольных областях сетчатки. Для окрашивания CD45 в качестве интересующей области была выбрана сетчатка из 20-кратного поля зрения размером 376 441 мкм ² . Общую площадь иммунофлуоресценции CD45 сетчатки рассчитывали для областей с интенсивностью пикселей выше определенного порога и усредняли для каждой группы.Средняя плотность рассчитывалась как среднее значение пикселя выше порога в областях, обозначенных порогом. Сумма плотности рассчитывалась как сумма значений пикселей для всех пикселей в пределах областей, обозначенных порогом. Для измерений TUNEL количество иммунофлуоресцентных клеток выше порогового значения определяли для областей с интенсивностью пикселей выше определенного порогового значения с помощью Image-Pro 6.2. Для измерения толщины внешнего ядерного слоя Image-Pro 6.2 использовался для измерения высоты внешнего ядерного слоя путем усреднения равномерно распределенных измерений, выполненных в 20-кратном поле [71].Эти расчеты были выполнены для регионов, отобранных по крайней мере от трех разных индивидуумов для каждого экспериментального условия.

Статистический анализ

Чтобы определить, были ли различия в толщине внешнего ядерного слоя, TUNEL-положительных клетках и микроглии в отслоенной сетчатке в разные моменты времени значительными, сначала был проведен дисперсионный анализ (ANOVA), чтобы подтвердить разницу в измерениях с p <0,05, считающуюся значимой. Последующее тестирование методом наименьших квадратов с поправкой Бонферрони было выполнено (p <0.007 считался значимым при 7 условиях, сравниваемых для толщины ONL и TUNEL, и p <0,0125 для анализа микроглии с 4 сравниваемыми условиями (RD с контролями)). Для анализа использовали SAS v9.2 от SAS Institute Inc. (Кэри, Северная Каролина).

Благодарности

Антитело к родопсину (Rho 4D2) было щедрым подарком доктора Р. Молдей из Университета Британской Колумбии. Антитело к BrdU (G3G4) было разработано S.J. Кауфман и антитело к транзитину (клон EAP3) были разработаны Г.Дж. Коул; оба антитела были получены Банком гибридом исследований развития, разработанным под эгидой NICHD и поддерживаемым Биологическим факультетом Университета Айовы, Айова-Сити, Айова 52242. Мы благодарим Бонгсу Кима за полезную техническую помощь.

Вклад авторов

Задумал и спроектировал эксперименты: CMC AJF. Проведены эксперименты: CMC CPZ MAS AB SR AJF. Проанализированы данные: CMC CPZ SR AM AJF. Предоставленные реагенты / материалы / инструменты для анализа: CMC AJF.Написал статью: CMC AJF. Критическая редакция рукописи: М.Л.

Список литературы

1. 1.
   Agrawal RN, He S, Spee C, Cui JZ, Ryan SJ и др. (2007) Модели пролиферативной витреоретинопатии in vivo. Nat Protoc 2: 67–77.
2. 2.
   Мандава Н., Блэкберн П., Пол Д.Б., Уилсон М.В., Рид С.Б. и др. (2002) Рибозим к ядерному антигену пролиферирующих клеток для лечения пролиферативной витреоретинопатии. Инвестируйте в офтальмол Vis Sci 43: 3338–3348.
3. 3.
   Schiff WM, Hwang JC, Ober MD, Olson JL, Dhrami-Gavazi E, et al.(2007) Оценка безопасности и эффективности химерного рибозима по отношению к ядерному антигену пролиферирующих клеток для предотвращения рецидива пролиферативной витреоретинопатии. Arch Ophthalmol 125: 1161–1167.
4. 4.
   Ирибарн М., Огава Л., Торбидони В., Доддс С.М., Доддс Р.А. и др. (2008) Блокада эндотелинергических рецепторов предотвращает развитие пролиферативной витреоретинопатии у мышей. Am J Pathol 172: 1030–1042.
5. 5.
   Луна Дж., Кьеллстрем С., Верардо М.Р., Льюис Г.П., Бьюн Дж. И др.(2009) Влияние временной отслойки сетчатки на размер полости и глиальное и нервное ремоделирование в модели Х-сцепленного ретиношизиса у мышей. Инвестируйте в офтальмол Vis Sci 50: 3977–3984.
6. 6.
   Фишер С.К., Льюис Г.П., Линберг К.А., Верардо М.Р. (2005) Клеточное ремоделирование в сетчатке млекопитающих: результаты исследований экспериментальной отслойки сетчатки. Prog Retin Eye Res 24: 395–431.
7. 7.
   Накадзава Т., Такеда М., Льюис Г.П., Чо К.С., Цзяо Дж. И др. (2007) Ослабление глиальных реакций и дегенерация фоторецепторов после отслоения сетчатки у мышей с дефицитом глиального фибриллярного кислого белка и виментина.Инвестируйте в офтальмол Vis Sci 48: 2760–2768.
8. 8.
   Лей Х., Ховланд П., Велес Г., Харан А., Гилбертсон Д. и др. (2007) Возможная роль PDGF-C в экспериментальной и клинической пролиферативной витреоретинопатии. Инвестируйте в офтальмол Vis Sci 48: 2335–2342.
9. 9.
   Hui YN, Goodnight R, Sorgente N, Ryan SJ (1989) Фиброваскулярная пролиферация и отслоение сетчатки после интравитреальной инъекции активированных макрофагов в глаз кролика. Am J Ophthalmol 108: 176–184.
10. 10.Эндрюс А., Бальчунайте Э., Леонг Флорида, Талльквист М., Сориано П. и др. (1999) Фактор роста, полученный из тромбоцитов, играет ключевую роль в пролиферативной витреоретинопатии. Инвестируйте в офтальмол Vis Sci 40: 2683–2689.
11. 11.
    Кук Б., Льюис Г.П., Фишер С.К., Адлер Р. (1995) Апоптотическая дегенерация фоторецепторов при экспериментальной отслойке сетчатки. Инвестируйте в офтальмол Vis Sci 36: 990–996.
12. 12.
    Chang CJ, Lai WW, Edward DP, Tso MO (1995) Апоптотическая смерть фоторецепторных клеток после травматической отслойки сетчатки у людей.Arch Ophthalmol 113: 880–886.
13. 13.
    Фишер С.К., Льюис Г.П. (2003) Клетки Мюллера и ремоделирование нейронов при отслоении и повторном прикреплении сетчатки и их потенциальные последствия для восстановления зрения: обзор и пересмотр последних данных. Видение Res 43: 887–897.
14. 14.
    Lewis GP, Fisher SK (2003) Повышение регуляции глиального фибриллярного кислого белка в ответ на повреждение сетчатки: его потенциальная роль в ремоделировании глии и сравнение с экспрессией виментина.Int Rev Cytol 230: 263–290.
15. 15.
    Lewis GP, Guerin CJ, Anderson DH, Matsumoto B, Fisher SK (1994) Быстрые изменения в экспрессии белков глиальных клеток, вызванные экспериментальным отслоением сетчатки. Am J Ophthalmol 118: 368–376.
16. 16.
    Сетхи С.С., Льюис Г.П., Фишер С.К., Лейтнер В.П., Манн Д.Л. и др. (2005) Ремоделирование глии и нейропластичность при отслойке сетчатки у человека с пролиферативной витреоретинопатией. Инвестируйте в офтальмол Vis Sci 46: 329–342.
17. 17.Kroll AJ, Machemer R (1968) Экспериментальная отслойка сетчатки у совы-обезьяны. 3. Электронная микроскопия сетчатки и пигментного эпителия. Am J Ophthalmol 66: 410–427.
18. 18.
    Андерсон Д.Х., Герин С.Дж., Эриксон П.А., Стерн У.Х., Фишер С.К. (1986) Морфологическое восстановление прикрепленной сетчатки. Инвестируйте в офтальмол Vis Sci 27: 168–183.
19. 19.
    Андерсон Д.Х., Стерн У.Х., Фишер С.К., Эриксон П.А., Боргула Г.А. (1983) Отслоение сетчатки у кошки: интерфейс пигментного эпителия-фоторецептора.Инвестируйте офтальмол Vis Sci 24: 906–926.
20. 20.
    Эриксон П.А., Фишер С.К., Андерсон Д.Х., Стерн У.Х., Боргула Г.А. (1983) Отслоение сетчатки у кошек: внешний ядерный и внешний плексиформные слои. Инвестируйте в офтальмол Vis Sci 24: 927–942.
21. 21.
    Lewis GP, Chapin EA, Luna G, Linberg KA, Fisher SK (2010) Судьба глии Мюллера после экспериментальной отслоения сетчатки: миграция ядер, деление клеток и образование субретинального глиального рубца. Мол Вис 16: 1361–1372.
22. 22.
    Накадзава Т., Хисатоми Т., Накадзава К., Нода К., Маруяма К. и др. (2007) Моноцитарный хемоаттрактантный белок 1 опосредует апоптоз фоторецепторов, вызванный отслоением сетчатки. Proc Natl Acad Sci U S A 104: 2425–2430.
23. 23.
    Льюис Г.П., Сетхи С.С., Картер К.М., Чартерис Д.Г., Фишер С.К. (2005) Активация микроглиальных клеток после отслоения сетчатки: сравнение между видами. Мол. Вис 11: 491–500.
24. 24.
    Хисатоми Т., Сакамото Т., Сонода К.Х., Цуцуми К., Цяо Н. и др.(2003) Клиренс апоптотических фоторецепторов: устранение апоптотических остатков в субретинальном пространстве и макрофагально-опосредованный фагоцитоз через рецептор фосфатидилсерина и интегрин alphavbeta3. Am J Pathol 162: 1869–1879.
25. 25.
    Канеко Х., Нишигучи К.М., Накамура М., Качи С., Терасаки Х. (2008) Характеристики микроглии костного мозга в нормальной и поврежденной сетчатке. Инвестируйте в офтальмол Vis Sci 49: 4162–4168.
26. 26.
    Верардо М.Р., Льюис Г.П., Такеда М., Линберг К.А., Бьюн Дж. И др.(2008) Аномальная реактивность клеток Мюллера после отслоения сетчатки у мышей с дефицитом GFAP и виментина. Инвестируйте в офтальмол Vis Sci 49: 3659–3665.
27. 27.
    Lewis GP, Charteris DG, Sethi CS, Fisher SK (2002) Животные модели отслоения и повторного прикрепления сетчатки: определение клеточных событий, которые могут повлиять на восстановление зрения. Глаз 16: 375–387.
28. 28.
    Линберг К.А., Сакаи Т., Льюис Г.П., Фишер С.К. (2002) Экспериментальная отслойка сетчатки в сетчатке суслика с доминированием конуса: морфология и базовая иммуноцитохимия.Vis Neurosci 19: 603–619.
29. 29.
    Jacobs GH, Calderone JB, Sakai T., Lewis GP, Fisher SK (2002) Модель на животных для изучения функции колбочек при отслоении сетчатки. Док офтальмол 104: 119–132.
30. 30.
    Fischer AJ, Bongini R (2010) Превращение мюллеровской глии в нейрональных предшественников в сетчатке. Мол нейробиол 42: 199–209.
31. 31.
    Fischer AJ, Bongini R, Bastaki N, Sherwood P (2011) Созревание фоторецепторов в сетчатке птиц стимулируется гормоном щитовидной железы.Неврология 178: 250–260.
32. 32.
    Фишер А.Дж., Омар Дж., Юбэнкс Дж., Макгуайр С.Р., Диркс Б.Д. и др. (2004) Различные аспекты глиоза в мюллеровской глии сетчатки могут быть индуцированы CNTF, инсулином и FGF2 в отсутствие повреждений. Молекулярное зрение 10: 973–986.
33. 33.
    Fischer AJ, Schmidt M, Omar G, Reh TA (2004) BMP4 и CNTF являются нейропротекторными и подавляют индуцированную повреждениями пролиферацию глии Мюллера в сетчатке. Молекулярная и клеточная нейробиология 27: 531–542.
34. 34.
    Fischer AJ, Scott MA, Zelinka C, Sherwood P (2010) Новый тип глиальных клеток в сетчатке стимулируется инсулиноподобным фактором роста 1 и может усугублять повреждение нейронов и глии Мюллера. Glia 58: 633–649.
35. 35.
    Фишер А.Дж., Скорупа Д., Шонберг Д.Л., Уолтон Н.А. (2006) Характеристика глюкагон-экспрессирующих нейронов в сетчатке курицы. J Comp Neurol 496: 479–494.
36. 36.
    Ghai K, Zelinka C, Fischer AJ (2010) Передача сигналов Notch влияет на нейропротекторные и пролиферативные свойства зрелой глии Мюллера.J Neurosci 30: 3101–3112.
37. 37.
    Мей Дж, Танос С. (2000) Развитие зрительной системы цыпленка. I. Дифференцировка клеток и гистогенез. Brain Res Brain Res Rev 32: 343–379.
38. 38.
    Танос С., Мей Дж. (2001) Развитие зрительной системы цыпленка. II. Механизмы аксонального наведения. Brain Res Brain Res Rev 35: 205–245.
39. 39.
    Kram YA, Mantey S, Corbo JC (2010) Фоторецепторы птичьих колбочек размещают сетчатку в виде пяти независимых, самоорганизующихся мозаик.PLoS One 5: e8992.
40. 40.
    Окано Т., Кодзима Д., Фукада Ю., Шичида Ю., Йошизава Т. (1992) Первичные структуры зрительных пигментов куриных шишек: родопсины позвоночных произошли из зрительных пигментов конусов. Proc Natl Acad Sci U S A 89: 5932–5936.
41. 41.
    Bruhn SL, Cepko CL (1996) Развитие паттерна фоторецепторов в сетчатке курицы. J Neurosci 16: 1430–1439.
42. 42.
    Моррис В.Б. (1970) Симметрия мозаики рецепторов, продемонстрированная у цыплят по частотам, расстоянию и расположению типов рецепторов сетчатки.J Comp Neurol 140: 359–398.
43. 43.
    Curcio CA, Sloan KR, Kalina RE, Hendrickson AE (1990) Топография фоторецепторов человека. J Comp Neurol 292: 497–523.
44. 44.
    Ochrietor JD, Moroz TP, Linser PJ (2010) Антиген 2M6 представляет собой специфичный для клеток Мюллера связанный с внутриклеточной мембраной белок семейства белков, связанных с сарколеммальной мембраной, а также TopAP. Мол Вис 16: 961–969.
45. 45.
    Fisher SK, Erickson PA, Lewis GP, Anderson DH (1991) Интраретинальная пролиферация, вызванная отслоением сетчатки.Инвестируйте в офтальмол Vis Sci 32: 1739–1748.
46. 46.
    Геллер С.Ф., Льюис Г.П., Андерсон Д.Х., Фишер С.К. (1995) Использование антитела MIB-1 для обнаружения пролиферирующих клеток в сетчатке. Инвестируйте в офтальмол Vis Sci 36: 737–744.
47. 47.
    Фишер А.Дж., Зелинка С., Скотт М.А. (2010) Неоднородность глии в сетчатке и зрительном нерве птиц и млекопитающих. PLoS One 5: e10774.
48. 48.
    Берт Д.В. (2007) Возникновение курицы как модельного организма: значение для сельского хозяйства и биологии.Poult Sci 86: 1460–1471.
49. 49.
    Джеральд Х. Джейкобс, Джей Нейтц, Крогнал М. (1985) Спектральная чувствительность конусов сусликов, измеренная с помощью мерцательной фотометрии ERG. J Comp Physiol A 156: 503–509.
50. 50.
    Curcio CA, Allen KA (1990) Топография ганглиозных клеток сетчатки глаза человека. J Comp Neurol 300: 5–25.
51. 51.
    Kryger Z, Galli-Resta L, Jacobs GH, Reese BE (1998) Топография фоторецепторов палочки и колбочки в сетчатке суслика.Vis Neurosci 15: 685–691.
52. 52.
    Headington K, Choi SS, Nickla D, Doble N (2011) Визуализация отдельных клеток сетчатки курицы с адаптивной оптикой. Curr Eye Res 36: 947–957.
53. 53.
    Bowmaker JK, Knowles A (1977) Визуальные пигменты и масляные капли сетчатки курицы. Видение Res 17: 755–764.
54. 54.
    Lewis GP, Erickson PA, Anderson DH, Fisher SK (1991) Распределение опсина и включение белка в фоторецепторы после экспериментального отслоения сетчатки.Exp Eye Res 53: 629–640.
55. 55.
    Fariss RN, Molday RS, Fisher SK, Matsumoto B (1997) Доказательства нормальных и дегенерирующих фоторецепторов о том, что два интегральных мембранных белка внешнего сегмента имеют отдельные транспортные пути. J Comp Neurol 387: 148–156.
56. 56.
    Рекс Т.С., Фарисс Р.Н., Льюис Г.П., Линберг К.А., Сокал И. и др. (2002) Обзор молекулярной экспрессии фоторецепторов после экспериментальной отслоения сетчатки. Инвестируйте офтальмол Vis Sci 43: 1234–1247.
57. 57.Rex TS, Lewis GP, Geller SF, Fisher SK (2002) Дифференциальная экспрессия уровней мРНК конического опсина после экспериментального отслоения и повторного прикрепления сетчатки. Мол Вис 8: 114–118.
58. 58.
    Nork TM, Millecchia LL, Strickland BD, Linberg JV, Chao GM (1995) Избирательная потеря синих колбочек и палочек при отслоении сетчатки у человека. Arch Ophthalmol 113: 1066–1073.
59. 59.
    Сакаи Т., Кальдерон Дж. Б., Льюис Г. П., Линберг К. А., Фишер С. К. и др. (2003) Восстановление фоторецепторов конуса после экспериментального отсоединения и повторного прикрепления: иммуноцитохимическое, морфологическое и электрофизиологическое исследование.Инвестируйте в офтальмол Vis Sci 44: 416–425.
60. 60.
    Davidorf FH, Havener WH, Lang JR (1975) Макулярное зрение после операции по отслоению сетчатки. Офтальмологическая хирургия 6: 74–81.
61. 61.
    Росс WH, Kozy DW (1998) Восстановление зрения при регматогенной отслойке сетчатки без макулы. Офтальмология 105: 2149–2153.
62. 62.
    Росс WH (2002) Восстановление зрения после отслойки сетчатки без желтого пятна. Глаз (Лондон) 16: 440–446.
63. 63.
    Diederen RM, La Heij EC, Kessels AG, Goezinne F, Liem AT и др.(2007) Операция по пломбированию склеры после отслоения сетчатки без макулы: ухудшение зрения через более чем 6 дней. Офтальмология 114: 705–709.
64. 64.
    Хасан Т.С., Саррафизаде Р., Руби А.Дж., Гарретсон Б.Р., Кучински Б. и др. (2002) Влияние продолжительности отслойки желтого пятна на результаты после восстановления склеральной пломбы первичной отслойки сетчатки без желтого пятна. Офтальмология 109: 146–152.
65. 65.
    Salicone A, Smiddy WE, Venkatraman A, Feuer W (2006) Восстановление зрения после процедуры склерального пломбирования при отслоении сетчатки.Офтальмология 113: 1734–1742.
66. 66.
    Гарбия М., Грандинетти Ф., Скавелла В., Сесере М., Эспозито М. и др. (2012) Корреляция между результатами оптической когерентной томографии в спектральной области и визуальными результатами после первичной регматогенной репарации отслойки сетчатки. Сетчатка 32: 43–53.
67. 67.
    Куадрос М.А., Сантос А.М., Мартин-Олива Д., Кальвенте Р., Тасси М. и др. (2006) Специфическая иммуномарка макрофагов и микроглиальных клеток головного мозга в центральной нервной системе развивающихся и зрелых цыплят.Журнал гистохимии и цитохимии: официальный журнал Общества гистохимии 54: 727–738.
68. 68.
    Wenningmann I, Dilger JP (2001) Кинетика ингибирования никотиновых рецепторов ацетилхолина (+) — тубокурарином и панкуронием. Mol Pharmacol 60: 790–796.
69. 69.
    Пилар Г., Нуньес Р., МакЛеннан И.С., Мерини С.Д. (1987) Мускариновая и никотиновая синаптическая активация развивающегося куриного ириса. J Neurosci 7: 3813–3826.
70. 70.
    Ghai K, Stanke JJ, Fischer AJ (2008) Формирование паттерна периферической маргинальной зоны предшественников в сетчатке курицы.Brain Res 1192: 76–89.
71. 71.
    Cebulla CM, Ruggeri M, Murray TG, Feuer WJ, Hernandez E (2010) Оптическая когерентная томография спектральной области в модели отслойки сетчатки у мышей. Exp Eye Res 90: 521–527.
72. 72.
    Jonas JB, Schneider U, Naumann GO (1992) Количество и плотность фоторецепторов сетчатки человека. Graefes Arch Clin Exp Ophthalmol 230: 505–510.

Как гуманно разделать свой куриный ужин

Как мой наставник, Стив Микс поместил старого петуха в смертоносный конус и вынул нож, он сказал что-то, я никогда не забуду.

«Каждый день должно что-то умирать, чтобы вы могли жить».

Вау. Это действительно так?

Г-н Микс пояснил: «Смерть — это не красиво, не так ли? Это уродливо и ужасно, но каждый день что-то умирает, чтобы вы могли жить. Это может быть курица, может быть, кочан салата или дуб где-нибудь в лесу, но все умирает, чтобы вы могли жить ».

В этой статье я объясню, почему вы захотите забить своих кур и как это сделать.В конце статьи я предлагаю печатный пакет PDF с моим собственным списком продуктов, контрольным списком подготовки и пошаговыми инструкциями.

Тем из нас, кто хочет выращивать пищу и проявлять большее уважение к животным, которые обеспечивают это для нас, мы захотим взять процесс разделки мяса в свои руки.

Переработка цыплят означает гораздо лучшую смерть для нашего мяса, чем фабричная альтернатива.

Вот небольшой документальный фильм о фермере Purdue.

В этой статье я покажу вам необходимые инструменты и дам пошаговые инструкции о том, как гуманно забить цыплят.

В конце статьи я предлагаю свой контрольный список в формате PDF и инструкции, которые вы можете взять с собой на следующую бойню.

Вот мои припасы.

Вы можете выполнить эту работу, используя только нож, кастрюлю, огонь и немного проточной воды.

Вы могли справиться с этой работой с помощью всего лишь ножа, котла для заваривания и огня.

Однако добавление некоторых стратегических инструментов и оборудования может иметь большое значение для более эффективной переработки цыплят.

(Примечание: это инструменты, которые я действительно использую и рекомендую. Вам может быть интересно узнать, что некоторые из ссылок являются партнерскими ссылками, что означает, что я получу комиссию, если вы купите)

Клетка для перевозки птицы используется для хранения живых цыплят, пока вы обрабатываете остальных.

Старая клетка, которая у нас была на ферме, отлично подходит для содержания нескольких цыплят перед тем, как их забьют.

Для бесперебойной работы важно отловить цыплят и обеспечить их легкий доступ.

Эта клетка не должна быть чем-то особенным.

Я использовал передвижной загон для выпаса птицы рядом с местом, где мы обрабатываем.

Для меньшего количества я использовал старую клетку, которая стояла у меня на ферме. Для большего удобства вы можете выбрать клетку для перевозки птицы.

Ограничивающие конусы (также известные как конусы убийства) отлично подходят для удержания птицы на месте во время убийства и удерживают их на месте, если после убийства сработают какие-либо нервы и птица начнет прыгать.Таким образом, у вас не будет «цыпленка, который бегает с отрезанной головой».

Кроме того, я считаю, что перевертывание их ног заставляет кровь течь к их голове, создавая успокаивающий эффект.

Я также считаю, что положение цыплят в «объятиях» в шишках успокаивает их нервы.

Очень важно успокоить цыпленка перед умерщвлением.

Напряженная курица может означать потерю уровня гликогена, что отрицательно скажется на вкусе, нежности, цвете и лежкости мяса.

Мы не хотим, чтобы вся наша хорошая жизнь нашей курицы была напрасной из-за чрезмерного стресса в конце ее жизни.

Подробнее об этой теории читайте в этой статье.

Я сделал свои собственные ограничивающие конусы из использованных дорожных конусов, прикрепленных к доске. В другой раз я придал форму для этой работы.

Я не уверен в санитарно-гигиенических характеристиках дорожных конусов, мои конусы из листового металла были хрупкими, и меня постоянно порезали.

Использование дорожных конусов в качестве сдерживающих конусов.

Наконец-то я остановил свой выбор на ограничительном конусе из нержавеющей стали.

Наконец я перешел на ограничительные конусы из нержавеющей стали.

Если вам нужно отказаться от использования конуса для убийства, вы можете просто повесить курицу вверх ногами на веревке.

Другой вариант — использовать фартук, чтобы положить курицу между ног, головой вниз, чтобы убить.

Здесь вы можете посмотреть видео очень мирного убийства в фартуке.

(Примечание: это инструменты, которые я действительно использую и рекомендую.Возможно, вы захотите узнать, что некоторые из ссылок являются партнерскими ссылками, а это значит, что я получу комиссию, если вы купите)

Острые ножи необходимы. Если у вас есть только один, я предлагаю универсальный нож от пяти до шести дюймов. Вы можете добавить нож меньшего размера (с лезвием около 3 дюймов), если хотите, для более мелких разрезов.

Я использую единственный 5-дюймовый нож, который больше не продается, а мое 3-дюймовое лезвие было изготовлено на заказ у друга. Если бы мне пришлось их заменить, я бы купил что-то вроде этого:

6-дюймовый универсальный нож для обвалки от Victorinox.

Вот красивый 3-дюймовый нож от Victorinox.

Вот 8-дюймовый нож, которым я пользуюсь, когда разрезаю курицу на куски.

Чтобы научиться точить ножи, мне нравится это обучающее видео от мастера по лезвиям Боба Крамера:

Для заточки я использую 6-дюймовую систему заточки Tri-Hone Смита, которую мне подарил друг. Сгодится чуть меньше 30 долларов.

Один из точильных камней отклеился всего за два использования, поэтому, когда мне нужно его заменить, я могу использовать что-то вроде этого.

Хонинговальная сталь — это стальной стержень, используемый для выравнивания кромок ножей. Сталь следует использовать регулярно, чтобы поддерживать острие ножа. Я использую круглую сталь Victorinox:

Заточил нож из круглой стали.

Видео о том, как использовать хонинговальную сталь, мастер по изготовлению лезвий Боб Крамерс, смотрите здесь.

Секаторы используются для отрезания головы (если вы не хотите ее отрывать) и отрезания шеи, если вы не хотите, чтобы шея оставалась прикрепленной.Мне нравится качественный секатор Felco F-2 Class.

Водонепроницаемый фартук для сохранения сухости тела. Я устал пропитываться водой, зараженной куриным кишечником, поэтому я купил пулю и получил водонепроницаемый фартук.

Водонепроницаемые сапоги для того, чтобы ноги оставались сухими.

Я пользуюсь недорогим набором от Servas уже много лет, но пользуюсь примерно двумя в год.

Мне было бы интересно узнать, потрачу ли я больше денег, чтобы получить более долговечные ботинки.

Я слышал много хорошего о Muck Boots от коллег-пермакологов, так что, может быть, я попробую пару таких в следующий раз. На Muck даже годовая гарантия!

(Примечание: это инструменты, которые я действительно использую и рекомендую. Возможно, вы захотите узнать, что некоторые из ссылок являются партнерскими ссылками, что означает, что я получу комиссию, если вы совершите покупку.)

Ковши классически незаменимы на ферме, и они являются важнейшим элементом в этой операции.

Вот все способы использования ведер для убоя:

• Сифон сливной из раковины
• Кровь под ограничивающими конусами
• Удерживайте внутренние кишки и другие части, которые вы не удерживаете
• Поймать или хранить перья

Вы можете приобрести использованные ведра в продуктовом магазине или на сайте Craigslist.

Вы, безусловно, можете купить их на ферме, в саду, в продовольственном магазине или в Интернете.

Scalder — еще одна необходимая вещь, которая может быть такой же простой, как большая кастрюля на открытом огне.

Работая в приюте в Гондурасе, я обрабатывал 600 цыплят в день, используя одну большую кастрюлю над огнем.

Мой первый опыт разделки цыплят (в Гондурасе), где мы переработали 600 птиц за один день!

Чтобы облегчить жизнь, вы можете использовать уличную газовую плиту для немного большего контроля. Я использовал это много лет.

Фритюрница для индейки на открытом воздухе имеет одну конфорку и отлично подойдет для ошпаривания.

Чтобы облегчить жизнь, воспользуйтесь электрическим шпателем. Я использую этот от Dux Industries, и он мне очень нравится.

Основным преимуществом этого ошейника является то, что вы можете установить желаемую температуру, и он будет автоматически поддерживать эту температуру.

В кастрюлях над огнем и газовых плитах вам нужно вручную поддерживать температуру на протяжении всего процесса. Аппараты для заваривания с регулируемой температурой могут избавить от стресса и труда.

Вы можете сделать его более эффективным, добавив слой пенопласта снаружи коробки для изоляции и, конечно, использовать какую-нибудь крышку, пока она нагревается.Поднимите воду, добавив сначала теплую воду, чтобы не было достаточно холодной воды для нагрева. Если кипящая вода должна начинаться с холодной воды, на нагрев может уйти несколько часов, поэтому планируйте ее соответствующим образом.

Если вы занимаетесь более крупной производственной деятельностью (обрабатываете 50 или более цыплят за раз), вы можете рассмотреть вариант ошейника промышленного класса от Featherman или что-то подобное.

Featherman даже имеет автоматический дункер и может обрабатывать несколько цыплят за раз.

(Примечание: это инструменты, которые я действительно использую и рекомендую.Возможно, вы захотите узнать, что некоторые из ссылок являются партнерскими ссылками, а это значит, что я получу комиссию, если вы купите)

Жидкое мыло можно использовать в кипящей воде, и оно в значительной степени снимет напряжение между кожей и перьями и облегчит их выход. Я просто наливаю немного Shaklee Basic H, но подойдет любое экологически чистое мыло.

Термометр полезен для контроля температуры кипящей воды.

Даже если вы используете электрический шпатель с автоматической настройкой, вам нужно будет следить за процессом разогрева и дважды проверять температуру на протяжении всего процесса.

Проверка температуры воды водонепроницаемым термометром. Этот продается как термометр для конфет и отлично работает.

Вот тот, который я использую.

Кочерга для ошпаривания — это своего рода выколачивающий инструмент, с помощью которого цыпленок перемещается, пока он находится в ошпаривателе. Если вы экономите ноги (для куриного бульона), вы не хотите ошпаривать курицу, придерживая за ноги, потому что ногам потребуется изрядная доля времени в кипящей воде.

Я использую ручной культиватор с 3 зубьями, как этот.

Вот такая же, как у меня.

Удлинители для подключения к источнику питания (при необходимости). Вот ассортимент шнуров для тяжелых условий эксплуатации.

Разветвитель для подключения электрического шпателя и щипчика. Возьмите один почти где угодно или найдите его на Amazon.

Машинный щипчик для ощипывания может упростить процесс ощипывания.Щипок необязателен и не обязателен, если вы собираете небольшое количество птиц или хотите ощипать вручную.

Мне нужно около десяти минут, чтобы ощипать одну птицу вручную, но я могу ощипать курицу с помощью машинного щипца примерно за 30 секунд.

Наш стажер, Дезире, помнит, как ее семья из четырех человек за один день собирала свой многолетний запас цыплят (всего 50 цыплят).

Для тех, кому нужен щипчик, вот несколько идей:

Вариант со съемником №1 — Сверло со съемником

Это будет ощипывать по одной курице за раз, и если вы будете делать это вручную, это будет своего рода улучшением.

Мой друг принес один из них на одну из наших забойных работ, но нам было трудно настроить буровую установку, чтобы она оставалась на месте и бежала, не удерживая спусковой крючок.

Кроме того, я не думаю, что у нас было достаточно сильное сверло, и его было проще выдергивать вручную.

Однако, поискав в Интернете, я решил, что есть несколько лучших вариантов.

Я почти купил это, чтобы продемонстрировать это, но у меня уже есть сверхмощный сборщик, поэтому я сэкономил деньги.

Похоже, это сработает, но я никогда не пробовал.

Видео этого щипца здесь.

Я хотел бы услышать мнение любого, кто успешно использовал хороший дрель.

Плукер, вариант № 2 — Плунжер барабанного типа

Это позволит ощипать по одной курице примерно за 30 секунд. Я вытащил свой всего за одну птицу а целых 50.

Я лично использую этот щипчик и считаю, что это отличный выбор для домашнего хозяйства.

Я получил свой от Strombergs Chickens здесь.

Вариант щупа № 3 — Коммерческий щупальщик (50 или более цыплят)

Они ощипывают 3 и более цыплят за раз, что может сэкономить вам много времени, если вы ощипываете большое количество птиц.

Это такие щипцы, которые Джоэл Салатин использует для обработки 100 цыплят в день.

Featherman, кажется, делает неплохие.Вы можете найти их здесь.

Я заранее арендовал один и обнаружил, что он быстро и легко ощипывает несколько цыплят за раз, однако я обнаружил, что он слишком велик для моей операции, так как я никогда не делал больше 50 цыплят за раз.

Кстати об аренде. Возможно, вам стоит арендовать это оборудование (если оно есть в вашем районе).

Поищите на Craigslist или позвоните местным фермерам, чтобы узнать, разрешат ли они вам сдавать их вещи в аренду. Если необходимо, арендуйте дом с друзьями, которым тоже нужно зарезать цыплят.

Я редко забиваю мясо в одиночку, так как кому-то гораздо веселее и эффективнее приносить свою птицу, и мы все участвуем в переработке всех цыплят.

Двое друзей, которые зарезали меня в 2013 году.

(Примечание: это инструменты, которые я действительно использую и рекомендую. Вам может быть интересно узнать, что некоторые из ссылок являются партнерскими ссылками, что означает, что я получу комиссию, если вы купите)

Большой котелок , наполненный холодной водой, можно использовать для того, чтобы окунуть курицу в холодную воду, чтобы быстро охладить птицу после ожога и предотвратить дальнейшее ошпаривание.

Охлаждающий горшок не является обязательным, но он даст вам больше контроля и не потребует особых усилий.

У вас, вероятно, уже есть один из них, но если нет, что-то вроде этого отлично подойдет.

Раковина и стол обработки в каком-то роде обязательны.

Для небольших операций вы можете использовать кухонную мойку, но большинство из них в любом случае предпочитают специальную мойку для обработки.

Я купил двойную раковину со стойкой на моем местном дворе металлолома примерно за 20 долларов.Я купил кухонный смеситель с распылительной головкой и добавил его в раковину, но вы можете использовать шланги с садовым распылителем.

Я использую шланги, безопасные для питьевой воды, так как буду распылять еду самостоятельно.

Если вы не заинтересованы в создании собственной раковины и стола, вы можете выбрать готовый мобильный стол для разделки мяса, подобный этому.

Или что-то более сложное и рассчитанное на двоих вроде этого.

Мыло для рук и полотенца отлично подходят для мытья посуды, если вам нужно сделать перерыв.

Чаша (и) из нержавеющей стали , наполненные холодной ледяной водой, отлично подходят для разделения и хранения таких вещей, как шеи, органы и ступни.

Выберите тот, который соответствует вашим потребностям.

Охладители , заполненные ледяной водой, быстро охлаждают готовых цыплят после их разделки. В этом нет необходимости, если вы обрабатываете только несколько птиц, но если вы собираетесь ненадолго прогуляться, храните цыплят в прохладной воде.

Подойдет любой домашний кулер, но если вам нужно что-то большее и предназначенное для разделки мяса, подумайте о таком сверхмощном.

Транспортный лоток (и) удобен для транспортировки цыплят из холодильника, если это необходимо.

Я использую лотки из нержавеющей стали, чтобы переносить птиц внутрь моей жене Ребекке, которая сушит их и готовит для холодильника.

Мы обрабатываем больше цыплят, чем поместится в холодильнике, поэтому я захожу внутрь. Кто-то нам подарил, а этот такой же, как наш.

Подставка для сушки или полотенца для сушки курицы перед упаковкой на хранение.

(Примечание: это инструменты, которые я действительно использую и рекомендую. Вам может быть интересно узнать, что некоторые из ссылок являются партнерскими ссылками, что означает, что я получу комиссию, если вы купите)

Вакуумный упаковщик для удаления лишнего воздуха из пакетов для хранения во избежание обмерзания в морозильной камере. Мы подобрали ваш повседневный вакуумный упаковщик в Target. Вот наш вакуумный упаковщик на Amazon.

Сумки для хранения птиц.Я использую специальные пакеты для вакуумного запечатывания (1 галлон или рулоны), которые идут в комплекте с моим вакуумным упаковщиком.

Весы для пищевых продуктов для взвешивания готовой птицы, если хотите.

Я просто использую небольшие весы для упаковки, но подойдут любые весы для пищевых продуктов. Мы всегда отмечаем их по весу маркером, чтобы планировать приготовление.

Теперь, когда у нас есть все припасы, давайте готовимся к разделке.

За неделю до забоя — Просмотрите свой контрольный список и закажите или заберите все необходимое до дня забоя.

За день до или в начале дня разделки.

• Обозначьте для обработки затененное место с доступом к электричеству и водопроводу.

• Обустройте зону обработки накануне или рано утром в день убоя.

12 часов до — Отложите корм, чтобы убедиться, что их урожай пустой. Это не обязательно, но упрощает и упрощает обработку.

Я просто отделяю цыплят, которых собираюсь разделить, в клетку или загон для выпасных птиц (в зависимости от того, сколько я перерабатываю), прежде чем кормить утром в день забоя (так как у цыплят нет корма ночью) .

2–4 часа до — Подготовьте заварочный аппарат заранее, чтобы нагреться до желаемой температуры. Для нагрева воды до 145 градусов у электрической модели или костра может потребоваться несколько часов, поэтому планируйте это соответствующим образом.

Разделка мяса, шаг за шагом:

Шаг № 1 — Поместите курицу в ограничивающий конус и осторожно протяните ее голову через дно.

Аккуратно выложите курицу в рожок лицевой стороной наружу.

Шаг № 2 — Удерживая голову подчиненной рукой, быстро надрежьте боковую часть шеи как можно ближе к скуловой кости (это оптимизирует объем шеи, который вы можете сэкономить). Обязательно надрежьте достаточно сильно, чтобы пройти сквозь кожу в кровеносные вены, но не слишком сильно, чтобы начать резать шею и / или трахею. Как только вы перережете главную артерию, они потеряют сознание и больше не будут чувствовать боли.Нервы у цыплят могут сработать, и они начнут подпрыгивать, но будьте уверены, они без сознания или даже мертвы и ничего не чувствуют.

Здесь я покажу вам, где резать. Чуть выше скулы.

Шаг № 3 — Быстро разрежьте другую сторону шеи, чтобы вызвать быстрое кровотечение. Вы заметили фиолетовые, красные и черные пятна внутри куриного мяса из продуктового магазина? Это потому, что они, скорее всего, были оглушены электроникой до того, как им позволили истечь кровью.Оглушение вызовет остановку сердца, не позволяя всей крови вытечь из мяса.

Шаг № 4 — Согните Курицу голову, чтобы вызвать кровотечение, и удерживайте ее голову неподвижно, если ее нервы заставляют ее трястись. Если выходит много крови, вы успешно убили, если нет, вам нужно будет быстро разрезать еще раз, пока не потечет достаточное количество крови. Поначалу у нее будет много крови, но через несколько секунд она значительно замедлится, а затем истечет до трех минут.

Обратите внимание на ведро ниже с водой. Вода предотвращает гелеобразование крови и прилипание к ведру (что затрудняет его очистку).

Шаг № 5 — Поместите курицу в кипящую воду. Заметьте, я не сказал кипяток. Мне нравится температура около 145 градусов.

Шаг № 6 — Тщательно и равномерно масштабируйте курицу, перемещая курицу с помощью какого-нибудь тыкающего устройства.

При 145 градусах требуется от 30 секунд до минуты. Вы можете проверить птицу во время ожога, постукивая по ее ногам и / или крыльям.Если ее ступни легко отслаиваются, а перья на крыльях легко вылезают наружу, значит, ожог хороший. Если не ошпарить достаточно долго, ощипать будет труднее. Если вы слишком долго ошпаривали, кожа цыплят начнет готовиться, может начать шелушиться и обесцвечиваться (становиться желтоватыми).

Шаг № 7 — Окуните жареную курицу в кастрюлю с прохладной водой, чтобы остановить процесс «готовки».

Шаг № 8 — Выщипывайте курицу вручную или значительно ускорьте работу с помощью машины (до 10 раз быстрее).

Машинный сборщик может ускорить процесс в 10 раз и более.

Шаг № 9 — Удалите лишние волосы или перья.

Шаг № 10 — Снимите кожу со ступней.

Шаг № 11 — Удалите ногти с пальцев ног, согнув их и потянув против изгиба.

Шаг № 12 — Отрежьте ногу, разрезав ее между суставами.Поднимите курицу, чтобы раскрыть сустав.

Шаг № 13 — Отрежьте или отрежьте голову ножницами.

Шаг № 14 — Если вы собираетесь оставить голову для приготовления, сотрите налет с гребня и бороздок и ущипните клюв, чтобы оторвать кутикулу.

Шаг № 15 — При необходимости опалите. Вы заметите, что на туше могут остаться небольшие волоски.Вы можете удалить их, если хотите, вручную или с помощью горелки. Однако в их хранении нет ничего плохого. Я вручную вытаскиваю все важные патчи, но в остальном меня это особо не беспокоит.

Шаг № 16 — Обрежьте кожу вокруг основания шеи, чтобы обнажить урожай.

Заметили выпуклость? Это урожай. Этот урожай казался наполненным воздухом и водой.

Шаг № 17 — Снимите злак с грудной кости снизу.

Шаг № 18 — Вставьте большой палец в шею между шеей, зобом, пищеводом и дыхательным горлом.

Шаг № 19 — Снимите урожай и кожу.

Шаг №20 — Обрежьте трубы вплотную к корпусу.

Шаг № 21 — Отрежьте шею ножницами, наклоненными вниз от тела, чтобы не было костей, которые можно было бы проткнуть в будущие пакеты для хранения.

Шаг № 22 — Отрежьте масляный сальник, надрезав его.

Шаг № 23 — Сделайте небольшой разрез на коже живота как можно ближе к вентиляционному отверстию, чтобы не порезать внутренности. Случайное разрезание внутренностей может означать разрезание кишечника и высыпание зараженного бактериями материала.

Я закончил резкой чуть выше выступающих костей. Обязательно разрезайте (не протыкайте), так как вы не хотите протыкать внутренности.

Шаг № 24 — Откройте тушку двумя руками.

Шаг № 25 — Потянитесь внутрь, царапая грудную клетку ногтями, освобождая внутренности от тела. Некоторые люди могут предпочесть для этого использовать латексные перчатки.

Шаг № 26 — Зацепите пищевод пальцем или просто возьмитесь за внутренности и полностью вытащите их.

Шаг № 27 — Положите курицу на стойку с раковиной, повесив внутренности в раковину. С помощью силы тяжести отрезали сердце и печень.Я жертвую часть печени, чтобы не перерезать желчный проток. Если перерезать желчный проток — ничего страшного, просто промойте птицу быстро.

Шаг № 28 — Положите сердце и печень в чашу из нержавеющей стали с холодной ледяной водой, если вы их экономите.

Шаг № 29 — Отрежьте желудок.

Если вы спасаете желудок, разрежьте его длинным путем с одного конца и удалите внутренности вместе с желтой подкладкой, промойте и отложите в сторону.

Шаг № 30 — При желании сохраните яички самцов для употребления в пищу.

Голова, шея, желудок, ступни, яички, печень съедобны и считаются деликатесами во многих странах.

Шаг № 31 — Обрежьте внутренности, разрезая как можно ближе к вентиляционному отверстию, чтобы сэкономить как можно больше жира.

Шаг № 32 — Вытяните легкие.Это может быть немного сложно и трудно объяснить. Протяните руку и погрузитесь в грудную клетку, царапая легкое ногтями, чтобы вытащить их.

Шаг № 33 — Ополосните птицу и поместите ее в холодильник.

Вы можете оставить птицу целиком или разрезать ее на части. Если вы хотите разрезать его, вот один способ сделать это.

Если вы хотите пойти дальше и развести птицу, вот как это сделать быстро и легко:

Отрежьте крылья , повернув птицу на бок, оттягивая крыло от тела.Потяните за крыло, пока вы делаете полукруг вокруг крыла. Крыло должно начать отделяться, когда вы будете тянуть и разрезать, и вы легко увидите, где можно разрезать под костью, чтобы удалить крыло. Я стараюсь резать как можно ближе к крылу, так как предпочитаю, чтобы лишнее мясо было на грудке, а не на крыле.

Разрежьте кожу между ногами и телом, положив курицу на спину и разрезав как можно ближе по ноге. Стрижка близко к ноге обеспечивает максимальное покрытие кожи груди.Я предпочитаю жертвовать небольшим количеством кожи на ноге, а не грудью.

Возьмите обе ножки вместе с цыпленком, чтобы открыть область между суставами для следующего разреза.

Отделите ногу от бедра, разрезав жировую линию.

Удалите заднюю часть , отрезав жирную линию, затем согнув и потянув, чтобы сломать и удалить.

Переверните грудку , обнажив кость.Надрежьте кость в центре.

Вытолкните килевую кость , согнув грудку вверх и выдернув ее.

Разрезать грудку пополам

Вытрите курицу полотенцем.

Поместите в пакет для хранения и запечатайте вакуумом.

Взвесьте и наклейте этикетку.

Поместите в холодильник на три дня, чтобы мясо стало мягким, затем поместите его в морозильную камеру для длительного хранения.

Теперь, когда вы закончили разделку, я должен упомянуть, как избавиться от всех ненужных товаров.

Накормите цыплят перьями или компостируйте их; перья полны белка, и то, что они не едят, разлагается и попадает в подстилку или побег.

КомпостВы должны положить их глубоко (не менее 3 футов), иначе нежелательные животные выкопают вашу кучу.

Другой вариант — сбросить излишки на краю вашего владения, чтобы прокормить популяцию хищников, помогая утолить их голод чем-то другим, кроме ваших живых цыплят.

А … момент, которого мы все ждали. Пора готовить ужин.

Я по опыту говорю вам, что немного радостей больше, чем сидеть за столом с друзьями или семьей, чтобы насладиться едой из своей страны.

Есть много способов приготовить эту курицу, но мои семьи еженедельно готовят простую выпечку.

• Промойте курицу.
• Намажьте птицу двумя-четырьмя столовыми ложками сливочного масла, чтобы она оставалась влажной во время запекания.
• Добавьте соль и перец по вкусу.
• Выпекайте при температуре 350 градусов полтора часа.
• Мы готовим пару сезонных овощей и готовим быстрый, легкий и полезный ужин.

Вот что такое люди!

Я подготовил загружаемый (распечатанный) PDF-файл, который включает:

• Мой список товаров для разделки мяса.
• Контрольный список, который я использую для подготовки к разделке.
• Пошаговые инструкции взять с собой на убойный стол.

Получите все ЗДЕСЬ!

Цыплята видят цвет лучше, чем люди

У цыплят может быть «птичий мозг», но их глаза — другое дело. Новое исследование показало, что в отношении цветового зрения эти сельскохозяйственные птицы во многих отношениях превзошли людей.

По словам исследователей, превосходное цветовое зрение связано со структурой хорошо организованного глаза.

Они нанесли на карту пять типов световых рецепторов в глазах цыплят. Они обнаружили, что рецепторы расположены в виде переплетенной мозаики, которая максимизирует способность курицы видеть много цветов в любой части сетчатки, светочувствительной структуре в задней части глаза.

«Основываясь на этом анализе, птицы явно превзошли нас в нескольких аспектах с точки зрения цветового зрения», — сказал автор исследования доктор Джозеф С. Корбо из Медицинской школы Вашингтонского университета в Сент-Луисе, Миссури. Организация в сетчатке курицы значительно превосходит ту, что наблюдается в большинстве других сетчаток и, конечно же, в сетчатке большинства млекопитающих.»

Птицы, вероятно, обязаны своим исключительным цветовым зрением тому, что они не провели период эволюционной истории в темноте, согласно Корбо.

Ночное видение основано на светочувствительных фоторецепторах сетчатки, называемых палочками, в то время как дневное зрение полагается на рецепторы. называемые конусами

В эпоху динозавров большинство млекопитающих стали вести ночной образ жизни на миллионы лет.Птицы, которые сейчас широко считаются потомками динозавров, никогда не вели такой же период, как ночные животные.В результате у птиц больше видов шишек, чем у млекопитающих.

«Сетчатка человека имеет колбочки, чувствительные к красным, синим и зеленым длинам волн», — пояснил Корбо. «Сетчатка птиц также имеет конус, который может обнаруживать фиолетовые длины волн, в том числе ультрафиолет, и специальный рецептор, называемый двойным конусом, который, как мы полагаем, помогает им обнаруживать движение».

Кроме того, большинство птичьих колбочек имеют особую структуру, которую Корбо сравнивает с «клеточными солнцезащитными очками», или каплей масла в форме линзы внутри конуса, которая пигментирована, чтобы отфильтровать весь свет, кроме определенного диапазона.Исследователи использовали эти капли, чтобы нанести на карту расположение различных типов колбочек на сетчатке курицы. Хотя разные типы колбочек были равномерно распределены по сетчатке, не было двух колбочек одного типа, расположенных рядом друг с другом.

«Это идеальный способ однородного выбора цветового пространства вашего поля зрения», — сказал Корбо. «Это похоже на глобальный паттерн, созданный из простого локализованного правила: вы можете быть рядом с другими конусами, но не рядом с такими же конусами.

Корбо предполагает, что дополнительная чувствительность к цвету может помочь птицам находить себе пару, что часто связано с ярким оперением или при кормлении ягодами или другими яркими фруктами.

Последующие исследования позволят определить, как устроена организация глаз. такие идеи могут в конечном итоге помочь ученым, стремящимся использовать стволовые клетки и другие новые методы для лечения почти 200 генетических заболеваний, которые могут вызывать различные формы слепоты.1 номер журнала PLoS One.

Вы видите то, что вижу я? 12 увлекательных фактов о Chicken Eyesight

Что вы знаете о курином зрении? Узнайте все об этом здесь.

Вы видите то, что вижу я?

Вы когда-нибудь задумывались, насколько хорошо ваши цыплята видят? Или они видят в цвете или только в черно-белом?

Или вы удивлялись тому, как они могут шпионить за крошечным жучком или семечком в траве? Или выбрать из своей ленты все «хорошее»?

Что ж, больше нечего удивляться! Я собрал несколько интересных фактов о курином зрении для вашего удовольствия от чтения.

Интересные факты о Chicken Eyesight

Куры видят в основном так же, как и люди — в цвете. У них есть роговица и радужная оболочка в каждом глазу, через которые свет проникает, прежде чем достигнет колбочек в сетчатке, которые воспринимают разные цвета. Но на этом сходство заканчивается.

Знаете ли вы:

• Цыплята обладают не только тремя основными цветовыми конусами, которые есть у людей (красный, желтый и синий), но также и конусом ультрафиолетового света (УФ).Это позволяет им различать и видеть гораздо больше цветов и оттенков, чем люди.

• УФ-конусы помогают им легко находить блестящих насекомых, семена, ягоды и фрукты среди травы и грязи, не отражающих УФ-излучение.

• Курица также использует свои ультрафиолетовые конусы, чтобы определить, какие цыплята наиболее здоровы, поскольку растущие перья отражают ультрафиолетовый свет. Таким образом, она может определить, какие цыплята растут быстрее и сильнее, и посвятить им больше своей энергии, чтобы обеспечить их выживание, поскольку у них больше шансов по сравнению с более слабыми цыплятами.

• У цыплят также есть конус обнаружения движения в глазах. Это позволяет им легче ощущать легкие движения, например, ползание насекомых по траве или скрывающегося хищника.

• Глаза курицы составляют около 10% всей массы головы (и наоборот, глаза человека составляют только 1%), что позволяет им видеть более крупные и четкие изображения.

• Поскольку их глаза расположены по бокам головы, а не спереди, у цыплят есть поле зрения 300 градусов, не поворачивая головы, по сравнению с полем зрения человека 180 градусов.

• Курица также может использовать каждый глаз независимо для разных задач одновременно, используя свое монокулярное зрение.

• В дополнение к верхним и нижним векам, подобным тем, которые есть у людей, у цыплят есть третье веко, называемое «мигающим веком», которое скользит горизонтально по их глазу вместо того, чтобы двигаться вверх или вниз. Эта мембрана прозрачна, поэтому часто во время купания в пыли или кормления в грязи куры закрывают мигающее веко, чтобы не допустить попадания мусора в глаза, при этом сохраняя возможность следить за хищниками или другой опасностью.

• Непосредственно перед вылуплением цыпленок поворачивается в скорлупе так, что его правый глаз оказывается рядом с панцирем (и поглощает свет через скорлупу), а его левый глаз прикрывается телом. В результате в правом глазу развивается близорукость, позволяющая курице искать пищу, а в левом — дальнозоркость, позволяющая курице искать хищников издалека. Вот почему, когда ястреб пролетает над головой, вы заметите, что ваши куры наклоняют голову левым глазом к небу.

• Цыплята могут ощущать присутствие или отсутствие света через шишковидную железу в своем мозгу, поэтому даже полностью слепой цыпленок может ощущать дневной свет, а также смену времен года, используя свою шишковидную железу.

• Поскольку глаза цыплят более чувствительны к свету, чем глаза людей, и могут обнаруживать гораздо более тонкие движения, использование искусственного света может привести к клеванию в стае, потому что щелчок лампочки, невидимой для нас, людей, кажется, они похожи на вращающийся диско-шар (поверьте, пребывание под диско-шаром сделало бы меня ворчливым! у них плохое ночное зрение из-за того, что их светочувствительность никогда не развивалась в сетчатке.

Красный цвет

Вам могли посоветовать использовать красную лампу накаливания вместо белой, чтобы предотвратить агрессию и проблемы с клеванием у ваших цыплят. Это потому, что цыплят привлекает красный цвет.

Цыплята инстинктивно клюют все и вся, и если они случайно начнут кровоточить, вытащат пушок, чтобы обнажить розоватую кожу, или просто раздражают кожу, это может привести к тому, что другие нападут на травмированного цыпленка.

Использование красной лампы накаливания делает все красное в брудере серым, что снижает вероятность того, что цыплята будут клевать друг друга.

Поскольку цыплят привлекает красный цвет, многие розничные торговцы делают кормушки и поилки для цыплят красными, чтобы привлечь к себе цыплят.

И если вам интересно, почему ваши куры любят клевать ваши накрашенные ногти на ногах, когда вы носите шлепанцы … ну, теперь вы знаете.

Куры видят и чувствуют гораздо больше, чем мы, как люди.Очаровательные животные, куры.

Прикрепить!

Присоединяйтесь ко мне здесь

Facebook | Twitter | Instagram | YouTube

© 2013 Fresh Eggs Daily, Inc. Все права защищены.

Конус для обработки цыпленка | Быстро и чисто моющийся АБС-пластик — время вылупления

Если продукт неисправен или отсутствуют детали, компания Hatching Time, LLC будет рада помочь вам заменить дефектные или отсутствующие детали. Пожалуйста, свяжитесь со службой поддержки по телефону: (800) 511-1369 или по электронной почте: support @ hatchingtime.com.

Возврат может быть осуществлен в течение 30 дней с даты получения товара. Заказчик несет ответственность за оплату обратной доставки. Товар должен быть в оригинальной упаковке и не использовался. Все детали должны быть включены в упаковку. Если товар показывает какие-либо признаки использования, вам не будет возвращена полная сумма покупной цены. Перед возвратом вы должны связаться со службой поддержки клиентов, чтобы получить разрешение на возврат. Свяжитесь со службой поддержки по телефону: (800) 511-1369 или по электронной почте: [email protected]

.

Заказчик несет ответственность за все расходы по обратной доставке.

Предметы невозврата:
— Подарочные карты

Возврат
Для завершения возврата нам потребуется квитанция или подтверждение покупки.

НЕ отправляйте продукт обратно производителю. После того, как служба поддержки одобрит возврат, его необходимо отправить обратно по адресу:

.

Hatching Time, LLC
303 Ruthar Drive
Suite C
Newark, DE 19711

Возврат (если применимо)
Как только ваш возврат будет получен и проверен, вы получите уведомление по электронной почте об утверждении или отклонении вашего возмещения.Если ваше предложение будет одобрено, возврат будет обработан, и кредит будет автоматически применен к вашему первоначальному способу оплаты в течение 30 дней.

Просроченный или отсутствующий возврат средств (если применимо)
Если вы не получили возмещение, выполните указанные ниже действия, прежде чем связываться с нами.

1. Проверьте свой банковский счет еще раз.
2. Обратитесь в компанию, обслуживающую вашу кредитную карту (может пройти некоторое время, прежде чем ваш возврат будет официально объявлен).
3. Обратитесь в свой банк. (Часто перед отправкой возврата требуется некоторое время на обработку).
4. Если вы все это сделали, но еще не получили возмещение, свяжитесь с нами по адресу: [email protected]

Предметы со скидкой (если применимо)
Возврату подлежат только товары по обычной цене; к сожалению, распродажа не подлежит возврату.

Обмен (если применимо)
После обращения в службу поддержки мы заменим товары только в том случае, если они неисправны или повреждены. Если вам нужно обменять его на такой же, отправьте нам письмо по электронной почте: support @ hatchingtime.com. Только после получения разрешения на возврат отправьте свой товар по следующему адресу:

Hatching Time, LLC
303 Ruthar Drive
Suite C
Newark, DE 19711

Подарки
Если товар был отмечен как подарок при покупке и доставке непосредственно вам, вы получите подарочный кредит на сумму вашего возврата. После получения возвращенного товара вам будет отправлен подарочный сертификат.

Если товар не был помечен как подарок при покупке или если даритель получил заказ, мы отправим дарителю возмещение, и этот человек узнает о возврате.

Исключенные продукты
В соответствии с санитарными правилами мы не принимаем подержанных товаров, возвращаемых . Hatching Time продает только чистые, неиспользованные товары. Обязательно проверьте продукты на наличие повреждений перед использованием. По вопросам, касающимся этих продуктов, свяжитесь с нами: (800) 511-1369.

Отгрузка
Чтобы вернуть продукт, вы ДОЛЖНЫ получить предварительное разрешение. Заказчик несет ответственность за все расходы по обратной доставке. Стоимость доставки не возвращается.Если вы получите возмещение, стоимость обратной доставки будет вычтена из вашего возмещения. В зависимости от того, где вы живете, время, необходимое для того, чтобы обмененный товар был доставлен вам, может варьироваться.

Если вы отправляете товар стоимостью более 75 долларов, вам следует рассмотреть возможность использования отслеживаемой службы доставки или приобретения страховки доставки. Время вылупления не гарантирует, что мы получим ваш возвращенный товар.

Конус для убоя цыплят (12 конусов)

Конус для убоя цыплят используется для облегчения забоя домашней птицы, обычно кур, уток или гусей.Такие шишки бывают разных размеров, чтобы приспособить их к птицам разного размера. Конус функционирует, удерживая птицу на месте — содержащуюся в неволе птицу можно поместить в воронку головой вперед, чтобы голова животного свешивалась вниз через небольшую часть воронки. Затем у животного может быть легче кровотечение (обычно через разрез в горле), в то время как воронка сдерживает любые движения крыльев и облегчает слив крови. Согласно некоторым источникам, смертоносные конусы обладают дополнительным преимуществом, вызывая чувство дезориентации, расслабления и эйфории у содержащихся в неволе птиц, поскольку некоторые птицы демонстрируют тоническую неподвижность, когда их держат вверх ногами.К некоторым смертоносным конусам прикреплено зажимное устройство, чтобы вывихнуть шею птицы перед кровотечением.

Этот метод можно использовать для убоя небольшого количества птиц, так как убой должен быть гуманным. Весь процесс от поимки до смерти должен выполняться под контролем, чтобы птицы были защищены от любой боли, страданий или страданий, которых можно избежать. Уверенный, терпеливый, спокойный и тихий подход к задаче даст наилучший результат как для птицы, так и для пользователя.

Конус смерти состоит из ограничивающего конуса с зажимным устройством внизу для вывиха шейки. Хотя этот метод не идеален, его можно использовать для убоя небольшого количества птиц. Птица помещается в конус головой вниз. Возьмитесь за шею зажимом и с усилием потяните ручку вниз, чтобы сместить шею.

Конус для убоя кур помогает птицеводам и перерабатывающим предприятиям улучшить свои услуги за счет убоя большего количества птицы в более короткие сроки.Он использует действие перевернутой птицы в конусах из нержавеющей стали на убой, что заставляет кровь течь к их головам, создавая успокаивающий эффект. Также «обнятое» положение цыплят в шишках успокаивает их нервы.

Преимущества конуса для уничтожения домашней птицы

• Конус для уничтожения птицы подходит для всех видов домашней птицы.
• Они делают убой птиц проще и быстрее.

Как использовать конус для уничтожения птицы

• Птицу следует поместить в конус так, чтобы голова свисала ниже.
• Возьмитесь за шею и убейте птицу.
• Проверьте, нет ли признаков того, что птица мертвая, нащупайте шею на предмет щели в позвонках;
• Убедитесь, что птица не дышит / убедитесь, что нет реакции моргания при прикосновении к глазу и в том, что зрачок расширен.
• Затем птицу можно подвергнуть дальнейшей обработке.

Знаки, подтверждающие, что птица мертва

• Пощупать шею на предмет трещины в позвонках
• Убедитесь, что птица не дышит
• Убедитесь, что нет реакции моргания при прикосновении к глазу и что зрачок расширен .